| 中文摘要 | 第3-5页 |
| 英文摘要 | 第5-6页 |
| 中英文缩略词列表 | 第11-12页 |
| 1 绪论 | 第12-24页 |
| 1.1 研究背景 | 第12-19页 |
| 1.1.1 红细胞程序性死亡 | 第12-14页 |
| 1.1.2 红细胞力学性能与红细胞程序性死亡 | 第14-16页 |
| 1.1.3 PKC与红细胞程序性死亡 | 第16-19页 |
| 1.2 问题的提出和研究意义 | 第19-21页 |
| 1.2.1 问题的提出 | 第19-20页 |
| 1.2.2 研究意义 | 第20-21页 |
| 1.3 研究内容和目的 | 第21-22页 |
| 1.4 本课题的创新点 | 第22-24页 |
| 2 PKC对红细胞锚蛋白外翻的影响 | 第24-38页 |
| 2.1 引言 | 第24-27页 |
| 2.2 材料和方法 | 第27-32页 |
| 2.2.1 PMA诱导红细胞锚蛋白外翻的检测 | 第27-29页 |
| 2.2.2 PKC抑制剂对PMA诱导红细胞锚蛋白外翻的检测 | 第29-31页 |
| 2.2.3 数据统计分析 | 第31-32页 |
| 2.3 实验结果 | 第32-35页 |
| 2.3.1 PMA对红细胞锚蛋白外翻的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.2 PKC抑制剂对PMA诱导红细胞锚蛋白外翻的影响 | 第33-35页 |
| 2.4 分析与讨论 | 第35-36页 |
| 2.5 本章小结 | 第36-38页 |
| 3 PKC诱导细胞胞外的钙离子流入对红细胞锚蛋白外翻的影响 | 第38-50页 |
| 3.1 引言 | 第38-39页 |
| 3.2 材料与方法 | 第39-44页 |
| 3.2.1 PKC抑制剂对PMA诱导红细胞胞内钙离子水平变化的检测 | 第39-41页 |
| 3.2.2 胞内钙离子与锚蛋白外翻红细胞的荧光双标检测 | 第41-43页 |
| 3.2.3 数据统计分析 | 第43-44页 |
| 3.3 实实验结果 | 第44-47页 |
| 3.3.1 PKC抑制剂对PMA诱导红细胞胞内钙离子含量的影响 | 第44-46页 |
| 3.3.2 胞内钙离子对红细胞锚蛋白外翻的影响 | 第46-47页 |
| 3.4 分析与讨论 | 第47-48页 |
| 3.5 本章小结 | 第48-50页 |
| 4 PKC诱导膜蛋白磷酸化对红细胞锚蛋白外翻的影响 | 第50-66页 |
| 4.1 引言 | 第50-51页 |
| 4.2 材料与方法 | 第51-60页 |
| 4.2.1 红细胞膜蛋白和胞间蛋白的提取 | 第51-53页 |
| 4.2.2 锚蛋白的分离与纯化 | 第53-54页 |
| 4.2.3 红细胞膜蛋白SDS-PAGE（5%-15%梯度胶） | 第54-57页 |
| 4.2.4 红细胞PKC、锚蛋白和磷酸丝氨酸的免疫印迹 | 第57-59页 |
| 4.2.5 数据统计分析 | 第59-60页 |
| 4.3 实验结果 | 第60-63页 |
| 4.3.1 红细胞锚蛋白的分离、纯化和锚蛋白的磷酸化检测 | 第60-61页 |
| 4.3.2 时间依赖的锚蛋白磷酸化检测 | 第61-62页 |
| 4.3.3 红细胞胞内PKCα 的激活检测 | 第62-63页 |
| 4.4 分析与讨论 | 第63-64页 |
| 4.5 本章小结 | 第64-66页 |
| 5 锚蛋白外翻对红细胞力学性能的影响以及巨噬细胞对锚蛋白外翻红细胞的噬红细胞作用 | 第66-78页 |
| 5.1 引言 | 第66页 |
| 5.2 材料与方法 | 第66-72页 |
| 5.2.1 PMA诱导红细胞锚蛋白外翻的力学性质检测 | 第66-69页 |
| 5.2.2 PMA诱导THP-1 分化成巨噬细胞以及其对锚蛋白外翻红细胞的识别 | 第69-71页 |
| 5.2.3 数据统计分析 | 第71-72页 |
| 5.3 实验结果 | 第72-74页 |
| 5.3.1 PMA诱导的锚蛋白外翻对红细胞形变能力的影响 | 第72-73页 |
| 5.3.2 巨噬细胞对PMA诱导的锚蛋白外翻红细胞的黏附影响 | 第73-74页 |
| 5.4 分析与讨论 | 第74-75页 |
| 5.5 本章小结 | 第75-78页 |
| 6 不同天龄红细胞锚蛋白外翻的检测以及PKC对不同天龄红细胞锚蛋白外翻的影响 | 第78-92页 |
| 6.1 引言 | 第78-79页 |
| 6.2 材材料和方法 | 第79-85页 |
| 6.2.1 密度剃度离心法分离不同天龄的红细胞 | 第79-80页 |
| 6.2.2 不同天龄红细胞锚蛋白外翻和胞内钙离子的测定以及PMA对不同天龄红细胞锚蛋白外翻和胞内钙离子的影响 | 第80-83页 |
| 6.2.3 不同天龄红细胞锚蛋白磷酸化的测定以及PMA对不同天龄红细胞锚蛋白磷酸化的影响 | 第83-84页 |
| 6.2.4 数据统计分析 | 第84-85页 |
| 6.3 实验结果 | 第85-88页 |
| 6.3.1 密度剃度离心分离不同天龄的红细胞 | 第85-86页 |
| 6.3.2 红细胞锚蛋白外翻和胞内钙离子的测定 | 第86-88页 |
| 6.3.3 红细胞锚蛋白磷酸化的测定 | 第88页 |
| 6.4 分析讨论 | 第88-89页 |
| 6.5 本章小结 | 第89-92页 |
| 7 PKC诱导膜骨架结合亲和力的变化对脊椎生物红细胞力学性能的影响 | 第92-108页 |
| 7.1 引言 | 第92-93页 |
| 7.2 材料和方法 | 第93-100页 |
| 7.2.1 血液的收集 | 第93-94页 |
| 7.2.2 人、鸡、蛙、鱼红细胞PKC的激活 | 第94-95页 |
| 7.2.3 人、鸡、蛙、鱼红细胞变形性检测 | 第95-96页 |
| 7.2.4 人、鸡、蛙、鱼红细胞杨氏模量检测 | 第96-99页 |
| 7.2.5 数据统计分析 | 第99-100页 |
| 7.3 实验结果 | 第100-105页 |
| 7.3.1 PMA对人、鸡、蛙、鱼红细胞形变能力的影响 | 第100-101页 |
| 7.3.2 PMA对人、鸡、蛙、鱼红细胞杨氏模量的影响 | 第101-105页 |
| 7.4 分析讨论 | 第105-107页 |
| 7.5 本章小结 | 第107-108页 |
| 8 PKC诱导人、鸡、蛙、鱼红细胞蛋白 4.1 磷酸化的检测及脊椎生物红细胞蛋白 4.1 的氨基酸序列分析 | 第108-128页 |
| 8.1 引言 | 第108-110页 |
| 8.2 材料和方法 | 第110-120页 |
| 8.2.1 红细胞膜骨架蛋白Spectrin以及磷酸丝氨酸蛋白的免疫印迹分析 | 第110-112页 |
| 8.2.2 红细胞膜蛋白的提取 | 第112-113页 |
| 8.2.3 红细胞膜蛋白SDS-PAGE（5%-15%梯度胶） | 第113-117页 |
| 8.2.4 红细胞膜蛋白Western Blot | 第117-119页 |
| 8.2.5 脊椎生物红细胞蛋白 4.1 氨基酸序列分析 | 第119页 |
| 8.2.6 数据统计分析 | 第119-120页 |
| 8.3 实实验结果 | 第120-125页 |
| 8.3.1 红细胞磷酸丝氨酸蛋白以及血影蛋白的免疫荧光染色结果 | 第120-121页 |
| 8.3.2 红细胞膜蛋白电泳 | 第121-122页 |
| 8.3.3 红细胞膜蛋白 4.1 磷酸化检测 | 第122-123页 |
| 8.3.4 红细胞膜蛋白 4.1 氨基酸序列分析 | 第123-125页 |
| 8.4 分析与讨论 | 第125-126页 |
| 8.5 本章小结 | 第126-128页 |
| 9 结论与展望 | 第128-130页 |
| 9.1 结论 | 第128-129页 |
| 9.2 不足之处与后续工作展望 | 第129-130页 |
| 致谢 | 第130-132页 |
| 参考文献 | 第132-146页 |
| 附录 | 第146-147页 |
| A. 作者在攻读学位期间发表的论文目录 | 第146页 |
| B. 参加科研项目情况 | 第146-147页 |
