| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-17页 |
| 1.1 华山松概况 | 第10页 |
| 1.1.1 华山松的形态特征和经济价值 | 第10页 |
| 1.1.2 华山松的繁殖方式及存在问题 | 第10页 |
| 1.2 植物细胞悬浮培养技术 | 第10-14页 |
| 1.2.1 植物悬浮培养技术的发展概况 | 第10-12页 |
| 1.2.2 细胞悬浮培养技术的影响因子 | 第12-14页 |
| 1.3 植物体细胞胚的成熟 | 第14-16页 |
| 1.3.1 植物体细胞胚的成熟研究概况 | 第14页 |
| 1.3.2 植物体细胞胚成熟的影响因子 | 第14-16页 |
| 1.4 实验目的和意义 | 第16-17页 |
| 第二章 华山松愈伤组织的诱导及增殖 | 第17-23页 |
| 2.1 试验材料 | 第17页 |
| 2.2 试验方法 | 第17-18页 |
| 2.2.1 华山松胚性愈伤组织的诱导 | 第17-18页 |
| 2.2.2 华山松胚性愈伤组织的增殖及保持 | 第18页 |
| 2.2.3 胚性愈伤组织的形态和细胞组织学鉴定 | 第18页 |
| 2.3 结果与分析 | 第18-21页 |
| 2.3.1 华山松愈伤组织的诱导 | 第18-20页 |
| 2.3.2 胚性愈伤组织的增殖及保持 | 第20-21页 |
| 2.3.3 胚性细胞染色后的细胞形态学观察 | 第21页 |
| 2.4 讨论 | 第21-23页 |
| 2.4.1 接种方式对愈伤组织诱导的影响 | 第21页 |
| 2.4.2 愈伤组织诱导影响因子的分析 | 第21-23页 |
| 第三章 华山松悬浮细胞系的建立及优化 | 第23-31页 |
| 3.1 试验材料 | 第23页 |
| 3.2 试验方法 | 第23-24页 |
| 3.2.1 胚性细胞悬浮培养体系的建立 | 第23页 |
| 3.2.2 悬浮培养条件的优化 | 第23-24页 |
| 3.3 统计分析方法 | 第24页 |
| 3.4 结果与分析 | 第24-29页 |
| 3.4.1 悬浮细胞培养体系的建立 | 第24-25页 |
| 3.4.2 悬浮培养条件的优化 | 第25-29页 |
| 3.5 讨论 | 第29-31页 |
| 3.5.1 激素组合使用比单独使用效果好 | 第29-30页 |
| 3.5.2 选择合适的外界培养条件对悬浮培养体系进行优化 | 第30-31页 |
| 第四章 华山松体细胞胚成熟条件的优化 | 第31-38页 |
| 4.1 试验材料 | 第31页 |
| 4.2 试验方法 | 第31-32页 |
| 4.2.1 成熟培养预处理 | 第31页 |
| 4.2.2 不同碳源种类及浓度对体胚成熟的影响 | 第31页 |
| 4.2.3 不同浓度PEG4000对体胚成熟的影响 | 第31-32页 |
| 4.2.4 ABA、PEG、蔗糖或麦芽糖最佳浓度组合筛选 | 第32页 |
| 4.3 结果与分析 | 第32-35页 |
| 4.3.1 不同碳源种类及浓度下体胚的生长情况 | 第33页 |
| 4.3.2 不同浓度PEG4000下体胚的生长情况 | 第33-34页 |
| 4.3.3 ABA、PEG、蔗糖或麦芽糖最佳浓度组合筛选 | 第34-35页 |
| 4.4 讨论 | 第35-38页 |
| 4.4.1 无激素预处理对体胚成熟的影响 | 第35-36页 |
| 4.4.2 华山松体胚初始诱导对体胚成熟的影响 | 第36页 |
| 4.4.3 ABA、PEG、蔗糖及麦芽糖对体胚成熟的影响 | 第36-37页 |
| 4.4.4 基因型对体胚成熟的影响 | 第37页 |
| 4.4.5 光照、空气等条件对体胚成熟的影响 | 第37-38页 |
| 第五章 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-43页 |
| 缩略词 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 个人简介 | 第45页 |
