| 中文摘要 | 第8-12页 |
| ABSTRACT | 第12-16页 |
| 符号说明 | 第17-19页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-38页 |
| 1.1 铝胁迫调控植物的生长发育 | 第19-23页 |
| 1.1.1 铝胁迫抑制根的生长发育 | 第19-20页 |
| 1.1.2 植物的抗铝机制 | 第20-21页 |
| 1.1.3 铝胁迫与植物激素相互作用参与对根伸长的抑制 | 第21-23页 |
| 1.2. 植物生长素的研究进展 | 第23-29页 |
| 1.2.1 生长素的合成与代谢 | 第23-25页 |
| 1.2.2 生长素的极性运输 | 第25-27页 |
| 1.2.3 生长素的信号转导 | 第27-29页 |
| 1.3. 植物细胞分裂素的研究进展 | 第29-35页 |
| 1.3.1 细胞分裂素的类型 | 第29-30页 |
| 1.3.2 细胞分裂素的生物合成与代谢 | 第30-31页 |
| 1.3.3 细胞分裂素信号通路:多级磷酸化途径 | 第31-35页 |
| 1.4. 生长素与其它植物激素相互作用参与调控根的生长发育 | 第35-36页 |
| 1.4.1 生长素与细胞分裂素调控根的发育 | 第35-36页 |
| 1.4.2 生长素与乙烯调控根的发育 | 第36页 |
| 1.5. 研究目的与意义 | 第36-38页 |
| 第二章 生长素合成基因YUCCA参与调控铝胁迫抑制主根伸长的分子机制研究 | 第38-78页 |
| 2.1 前言 | 第38-39页 |
| 2.2 实验材料 | 第39-40页 |
| 2.2.1 植物材料 | 第39页 |
| 2.2.2 菌株和载体 | 第39-40页 |
| 2.2.3 实验试剂 | 第40页 |
| 2.2.4 实验仪器 | 第40页 |
| 2.3 实验方法 | 第40-57页 |
| 2.3.1 植物培养 | 第40-41页 |
| 2.3.2 培养基及溶液配制 | 第41-43页 |
| 2.3.3 植物基因组DNA的提取 | 第43页 |
| 2.3.4 基因克隆与载体构建 | 第43-45页 |
| 2.3.5 质粒的提取 | 第45页 |
| 2.3.6 大肠杆菌的转化 | 第45-46页 |
| 2.3.7 农杆菌的转化 | 第46页 |
| 2.3.8 农杆菌介导的植物转化过程 | 第46-47页 |
| 2.3.9 植物RNA的提取 | 第47页 |
| 2.3.10 RNA反转录 | 第47-48页 |
| 2.3.11 实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第48页 |
| 2.3.12 共聚焦激光扫描显微镜的使用 | 第48-49页 |
| 2.3.13 GUS染色 | 第49页 |
| 2.3.14 酵母单杂交实验 | 第49-51页 |
| 2.3.15 双荧光素酶报告基因检测 | 第51-53页 |
| 2.3.16 染色质免疫共沉淀(ChIP) | 第53-56页 |
| 2.3.17 实验所用引物 | 第56-57页 |
| 2.4 结果与分析 | 第57-74页 |
| 2.4.1 YUC基因参与铝胁迫对主根伸长的抑制 | 第57-58页 |
| 2.4.2 YUC基因调控根尖TZ区铝诱导的生长素积累 | 第58-59页 |
| 2.4.3 铝胁迫特异性诱导YUC基因在根尖TZ区上调表达 | 第59-62页 |
| 2.4.4 铝胁迫诱导YUC基因在根尖TZ区的异位表达依赖于乙烯信号 | 第62-63页 |
| 2.4.5 EIN3介导乙烯信号响应铝胁迫直接调控YUC9基因的异位表达. | 第63-66页 |
| 2.4.6 YUC基因介导内源生长素合成对铝胁迫抑制主根伸长的响应是依赖于乙烯信号 | 第66-69页 |
| 2.4.7 PIF4参与铝胁迫对植物主根伸长的抑制 | 第69-70页 |
| 2.4.8 PIF4调控铝胁迫诱导的根尖TZ区YUC基因的上调表达及生长素的积累 | 第70-72页 |
| 2.4.9 铝胁迫诱导PIF4基因在根尖TZ区的异位表达位于乙烯信号的下游 | 第72-74页 |
| 2.5 讨论 | 第74-78页 |
| 第三章 生长素与细胞分裂素协同介导铝胁迫抑制主根伸长 | 第78-113页 |
| 3.1 前言 | 第78-79页 |
| 3.2 实验材料 | 第79-81页 |
| 3.2.1 植物材料 | 第79-80页 |
| 3.2.2 菌株和载体 | 第80页 |
| 3.2.3 实验试剂 | 第80页 |
| 3.2.4 实验仪器 | 第80-81页 |
| 3.3 实验方法 | 第81-85页 |
| 3.3.1 植物培养 | 第81页 |
| 3.3.2 培养基及溶液配制 | 第81页 |
| 3.3.3 植物基因组DNA的提取 | 第81页 |
| 3.3.4 基因克隆与载体构建 | 第81页 |
| 3.3.5 质粒的提取 | 第81页 |
| 3.3.6 大肠杆菌的转化 | 第81页 |
| 3.3.7 农杆菌的转化 | 第81页 |
| 3.3.8 农杆菌介导的植物转化过程 | 第81-82页 |
| 3.3.9 植物RNA的提取 | 第82页 |
| 3.3.10 RNA反转录 | 第82页 |
| 3.3.11 实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第82页 |
| 3.3.12 共聚焦激光扫描显微镜的使用 | 第82页 |
| 3.3.13 酵母单杂交实验 | 第82页 |
| 3.3.14 双荧光素酶报告基因检测 | 第82页 |
| 3.3.15 染色质免疫共沉淀(ChIP) | 第82页 |
| 3.3.16 实验所用引物 | 第82-85页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第85-109页 |
| 3.4.1 细胞分裂素加重铝胁迫对主根伸长的抑制 | 第85-87页 |
| 3.4.2 铝胁迫增强根尖TZ区细胞分裂素信号的积累 | 第87-91页 |
| 3.4.3 铝胁迫诱导细胞分裂素在根尖TZ区的响应及对根伸长的抑制依赖于生长素信号 | 第91-95页 |
| 3.4.4 铝胁迫诱导细胞分裂素在根尖TZ区的响应及对根伸长的抑制依赖于乙烯信号 | 第95-97页 |
| 3.4.5 乙烯介导铝胁迫诱导细胞分裂素在根尖TZ区的响应依赖于生长素 | 第97页 |
| 3.4.6 IPT基因受铝胁迫在根尖TZ区诱导表达进而参与对根伸长的抑制 | 第97-99页 |
| 3.4.7 IPT基因在根尖TZ区对铝胁迫的响应依赖于生长素 | 第99-102页 |
| 3.4.8 生长素介导的IPT基因在根尖TZ区对铝胁迫的响应是受乙烯所调控的 | 第102-106页 |
| 3.4.9 ARF7调控IPT5和IPT7的转录 | 第106-109页 |
| 3.5. 讨论 | 第109-113页 |
| 总结 | 第113-116页 |
| 参考文献 | 第116-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第139-140页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第140页 |
