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栀子提取物对Aβ1-40及H2O2所致的PC12细胞损伤的保护作用

摘要第1-5页
ABSTRACT第5-11页
1 文献综述第11-21页
   ·栀子概述第11-13页
     ·栀子主要化学成分第11-12页
       ·环烯醚萜类第11页
       ·藏红花素第11页
       ·挥发油第11-12页
       ·黄酮类第12页
       ·有机酸类第12页
     ·栀子主要药理作用第12-13页
       ·对神经系统的保护作用第12-13页
       ·对心血管系统的作用第13页
       ·保肝利胆作用第13页
   ·阿兹海默病概述第13-19页
     ·病理特征第14页
     ·病因分析第14-15页
       ·胆碱性假说(Cholinergic hypothesis)第14页
       ·类淀粉蛋白质假说(Amyloid hypothesis)第14-15页
       ·微管相关蛋白质假说(Tau hypothesis)第15页
       ·氧化应激假说第15页
     ·阿兹海默症(AD)的发病机制第15-17页
       ·遗传因素第15-16页
       ·tau蛋白因素第16页
       ·胆碱能系统因素第16页
       ·自由基因素第16-17页
       ·细胞凋亡因素第17页
       ·炎症和免疫因素第17页
     ·中医学对阿兹海默症的论述第17-18页
       ·中医学对老年痴呆的认识第17-18页
       ·中医学对老年痴呆症病因、病机的认识第18页
     ·阿兹海默症治疗的研究进展第18-19页
   ·本课题的研究内容及方法、目的意义第19-21页
     ·研究内容及方法第19-20页
       ·建立Aβ_(1-40)及H_2O_2所致的PC12细胞损伤模型第19页
       ·栀子提取物中对损伤模型起保护作用的成分筛选第19页
       ·栀子提取物对损伤模型保护作用的机理研究第19-20页
       ·四种粗提物中神经保护作用的成分分析第20页
     ·研究的目的意义第20-21页
2 Aβ_(1-40)及H_2O_2所致的PC12细胞损伤模型的建立第21-28页
   ·试验材料第21-22页
     ·细胞株及培养条件第21页
     ·主要仪器及耗材第21-22页
     ·主要试剂及配制方法第22页
   ·实验方法第22-24页
     ·细胞培养第22-23页
       ·细胞培养第22页
       ·细胞传代第22页
       ·细胞计数第22页
       ·细胞冻存第22-23页
       ·细胞复苏第23页
     ·MTT法绘制PC12细胞的生长曲线第23页
     ·Aβ_(1-40)所致的PC12细胞损伤模型的建立第23-24页
     ·H_2O_2所致的PC12细胞损伤模型的建立第24页
   ·结果与分析第24-27页
     ·PC12细胞生长曲线的绘制结果第24-25页
     ·Aβ_(1-40)所致的PC12细胞损伤模型的建立结果第25-26页
     ·H_2O_2所致的PC12细胞损伤模型的建立结果第26-27页
   ·本章小结第27-28页
3 栀子提取物对PC12细胞损伤模型的保护作用评价第28-41页
   ·试验材料第28页
     ·实验材料第28页
     ·主要仪器及耗材第28页
     ·主要试剂及配制方法第28页
   ·实验方法第28-30页
     ·MTT法确定栀子粗提物和单体的给药剂量第28-29页
     ·栀子单体对Aβ_(1-40)所致的PC12细胞损伤保护作用的评价第29页
     ·栀子粗提物对Aβ_(1-40)所致的PC12细胞损伤保护作用的评价第29页
     ·栀子单体对H_2O_2所致的PC12细胞损伤保护作用的评价第29页
     ·栀子粗提取对H_2O_2所致的PC12细胞损伤保护作用的评价第29-30页
   ·实验结果与分析第30-39页
     ·MTT法确定栀子粗提物及栀子单体的给药剂量第30-32页
     ·栀子单体对Aβ_(1-40)所致的细胞损伤保护作用的评价结果第32-33页
     ·栀子粗提取对Aβ_(1-40)所致的细胞损伤保护作用的评价结果第33-35页
     ·栀子单体对H_2O_2所致的细胞损伤的保护作用评价结果第35-37页
     ·栀子粗提取对H_2O_2所致的细胞损伤保护作用评价结果第37-39页
   ·本章小结第39-41页
4 栀子提取物对PC12细胞损伤保护作用的机理研究第41-51页
   ·实验材料第41-42页
     ·实验材料第41页
     ·主要仪器及耗材第41页
     ·主要试剂及配制方法第41-42页
       ·LDH试剂盒配制第41页
       ·T-SOD试剂盒的配制第41-42页
       ·GSH-PX试剂盒配制第42页
       ·MDA试剂盒的配制第42页
   ·实验方法第42-46页
     ·培养液中乳酸脱氢酶(LDH)活力的测定第42-43页
     ·细胞培养液中总超氧化物歧化酶(T-SOD)活力的测定第43-44页
     ·细胞培养液中谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)的测定第44-45页
     ·细胞培养液中丙二醛(MDA)的测定第45-46页
   ·结果与讨论第46-49页
     ·PC12细胞培养液中LDH活力的测定结果第46-47页
     ·T-SOD及GSH-PX活力测定结果第47-48页
     ·MDA含量的测定结果第48-49页
   ·本章小结第49-51页
5 四种粗提物中神经保护作用的成分分析第51-58页
   ·实验材料第51页
     ·试验材料第51页
     ·主要仪器第51页
   ·实验方法第51-52页
     ·HPLC色谱条件第51-52页
     ·标准品溶液的配制与标准曲线的制作第52页
     ·样品的配制及测定第52页
   ·结果与分析第52-56页
     ·标准品溶液的标准曲线的制作第52-55页
     ·各提取方法中特征性成分的含量第55-56页
     ·粗提物与单体的抗AD活性比较第56页
   ·本章小结第56-58页
6 主要结论、创新点及展望第58-60页
   ·主要结论第58页
   ·创新点第58-59页
   ·展望第59-60页
参考文献第60-66页
英文缩略词第66-67页
作者简介第67-68页
致谢第68页

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