| 中文摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 英文縮略语表 | 第11-12页 |
| 目录 | 第12-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 第一部分 脑健片对MCAO大鼠脑缺血后血管新生作用机制研究 | 第18-48页 |
| 1 实验材料 | 第18-19页 |
| ·实验动物 | 第18页 |
| ·实验药物 | 第18页 |
| ·主要实验仪器 | 第18-19页 |
| ·主要实验试剂 | 第19页 |
| 2 实验方法 | 第19-20页 |
| ·模型建立 | 第19-20页 |
| ·动物分组与给药 | 第20页 |
| 3 指标检测及方法 | 第20-26页 |
| ·模型建立成功评价 | 第20页 |
| ·血管新生相关指标检测 | 第20-21页 |
| ·氧化应激相关指标检测 | 第21页 |
| ·Nrf2-ARE信号通路相关分子检测 | 第21-26页 |
| 4. 结果处理及统计学分析 | 第26页 |
| 5. 结果 | 第26-42页 |
| ·模型评价 | 第26-28页 |
| ·不同时间点各组大鼠vWF表达及微血管密度(MVD)表达结果 | 第28-30页 |
| ·不同时间点各组大鼠脑组织S OD、MDA、GSH含量及GSH-Px活性结果 | 第30-32页 |
| ·不同时间点各组大鼠Nrf2、HO-1、γ-GCSmRNA表达结果分析 | 第32-38页 |
| ·不同时间点各组大鼠Nrf2、HO-1、γ-GCS蛋白表达结果 | 第38-42页 |
| 6. 讨论 | 第42-47页 |
| ·MCAO模型的选择 | 第42页 |
| ·血管新生在脑缺血中的意义 | 第42-43页 |
| ·Nrf2-ARE信号通路与脑缺血氧化应激 | 第43-45页 |
| ·“祛瘀生新”内涵及机理探讨 | 第45-46页 |
| ·脑健片组方原理 | 第46-47页 |
| 7. 结论 | 第47-48页 |
| 第二部分 脑健片对氧化应激损伤血管内皮细胞作用机制研究 | 第48-70页 |
| 1. 实验材料 | 第48-51页 |
| ·实验药物 | 第48页 |
| ·实验动物及含药血清制备 | 第48页 |
| ·实验试剂 | 第48-50页 |
| ·实验仪器 | 第50-51页 |
| 2. 实验方法 | 第51-56页 |
| ·细胞培养 | 第51页 |
| ·体外氧化应激细胞模型的建立 | 第51页 |
| ·细胞分组与处理 | 第51页 |
| ·MTT法检测不同含药血清处理组的细胞增殖 | 第51-52页 |
| ·流式细胞术检测不同含药血清预处理组的细胞凋亡 | 第52页 |
| ·不同处理后细胞SOD,MDA,GSH水平差异检测 | 第52页 |
| ·Real Time-PCR检测不同处理后细胞Nrf2,HO-1,γ-GC S基因变化 | 第52-55页 |
| ·Western blot检测不同处理后Nrf2,HO-1,γ-GCS表达变化 | 第55-56页 |
| 3 结果处理及统计学分析 | 第56页 |
| 4 结果与分析 | 第56-65页 |
| ·细胞培养及观察 | 第56-57页 |
| ·体外氧化应激细胞模型的建立 | 第57-58页 |
| ·不同含药血清对H_2O_2处理血管内皮细胞后存活情况的影响 | 第58-59页 |
| ·不同含药血清对H_2O_2处理血管内皮细胞后细胞凋亡的影响 | 第59-61页 |
| ·不同含药血清对H_2O_2处理血管内皮细胞后细胞内MDA、SOD、GSH含量的变化 | 第61-62页 |
| ·不同含药血清对H_2O_2处理血管内皮细胞后细胞内Nrf2,HO-1,γ-GCS mRNA水平变化 | 第62-64页 |
| ·不同含药血清对H_2O_2处理血管内皮细胞后细胞内Nrf2、HO-1、γ-GCS蛋白表达变化 | 第64-65页 |
| 5. 讨论 | 第65-69页 |
| ·氧化应激血管内皮细胞损伤模型的选择 | 第65-66页 |
| ·血管内皮细胞与氧化应激 | 第66-67页 |
| ·Nrf2-ARE信号通路与血管内皮细胞 | 第67-68页 |
| ·脑健片含药血清研究 | 第68-69页 |
| 6. 结论 | 第69-70页 |
| 第三部分 主要创新点 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-80页 |
| 综述 | 第80-87页 |
| 参考文献 | 第84-87页 |
