| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 缩略词表 | 第9-11页 |
| 第1章 前言 | 第11-22页 |
| ·硫肽类抗生素的研究进展 | 第11-16页 |
| ·硫肽类抗生素的主要分类 | 第11-12页 |
| ·硫肽类抗生素的生物合成 | 第12-13页 |
| ·硫肽类抗生素的翻译后修饰 | 第13-14页 |
| ·硫肽类抗生素的作用机制 | 第14-15页 |
| ·细菌对硫肽类抗生素的潜在耐药机制 | 第15-16页 |
| ·透明颤菌血红蛋白的最新研究进展 | 第16-20页 |
| ·透明颤菌血红蛋白作用机制 | 第16-17页 |
| ·透明颤菌血红蛋白主要应用领域 | 第17-20页 |
| ·本论文研究的技术路线 | 第20页 |
| ·本论文研究内容及研究意义 | 第20-22页 |
| ·S.actuosus出发菌株的筛选及发酵因素的确定 | 第20-21页 |
| ·vgb基因在S.actuosus中的过表达及其对诺西肽产量的影响 | 第21页 |
| ·bldD基因在S.actuosus中的过表达及其对诺西肽产量的影响 | 第21页 |
| ·研究意义 | 第21-22页 |
| 第2章 材料与方法 | 第22-39页 |
| ·材料 | 第22-26页 |
| ·菌株 | 第22页 |
| ·质粒 | 第22-23页 |
| ·引物 | 第23页 |
| ·培养基 | 第23-26页 |
| ·缓冲液和有机混合液的配制 | 第26-30页 |
| ·工具酶及标记物等 | 第28-29页 |
| ·相关试剂及分子试剂盒 | 第29页 |
| ·设备仪器等 | 第29-30页 |
| ·实验方法 | 第30-39页 |
| ·大肠杆菌质粒DNA的小量提取 | 第30-31页 |
| ·DNA片段的PCR扩增 | 第31页 |
| ·DNA片段的酶切和连接 | 第31-32页 |
| ·DNA的琼脂糖凝胶电泳 | 第32-33页 |
| ·DNA的纯化 | 第33-34页 |
| ·S.actuosus总基因组DNA的小量提取 | 第34页 |
| ·大肠杆菌感受态制备及转化 | 第34-35页 |
| ·S.actuosus原生质体的制备及转化 | 第35-37页 |
| ·S.actuosus孢子种的制备及保存 | 第37页 |
| ·用分光光度计法测定诺西肽含量 | 第37-38页 |
| ·用生物活性方法检测 | 第38-39页 |
| 第3章 S.actuosus出发菌株的筛选及发酵因素的确定 | 第39-43页 |
| ·引言 | 第39页 |
| ·结果与分析 | 第39-42页 |
| ·S.actuosus出发菌株的分离纯化及高活性菌株的筛选 | 第39页 |
| ·S.actuosus中的诺西肽产量与发酵时间之间的关系 | 第39-41页 |
| ·S.actuosus中的诺西肽产量与发酵体积之间的关系 | 第41-42页 |
| ·讨论 | 第42-43页 |
| 第4章 vgb基因在S.actuosus中的过表达及其对诺西肽产量的影响 | 第43-50页 |
| ·引言 | 第43页 |
| ·结果与分析 | 第43-49页 |
| ·构建pUC18-vgb、pZM-vgb和pZMW-vgb质粒 | 第43-46页 |
| ·构建S.actuosus/pZM等四种工程菌株 | 第46-48页 |
| ·、S.actuosus与vgb基因过表达工程菌株的抑菌实验及定量测定 | 第48-49页 |
| ·讨论 | 第49-50页 |
| 第5章 bldD基因在S.actuosus中的过表达及其对诺西肽产量的影响 | 第50-53页 |
| ·引言 | 第50页 |
| ·结果与分析 | 第50-52页 |
| ·、S.actuosus/pZMW-bldD工程菌株的构建 | 第50-51页 |
| ·S.actuosus与bldD基因过表达工程菌株的抑菌实验及定量测定 | 第51-52页 |
| ·讨论 | 第52-53页 |
| 第6章 总结 | 第53-55页 |
| ·获得的主要实验结果 | 第53页 |
| ·创新点 | 第53页 |
| ·下阶段的研究方向 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 附录 (DNA序列分析图谱) | 第60-61页 |
| 论文发表情况 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
