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重组腺病毒Ad35-anti-PD-1表达的PD-1抗体增强CTL抗肿瘤功能的研究

中文摘要第1-9页
Abstract第9-11页
缩略词表第11-12页
目录第12-16页
第一章 绪论第16-22页
 1 CTL的过继细胞治疗第16-19页
   ·CTL的分群第16页
   ·活化 CTL的特异性抗原第16-17页
   ·CTL特异性抗肿瘤的机制第17-18页
   ·CTL的体外培养第18页
   ·CTL的临床应用及提高疗效的途径第18-19页
 2 抗肿瘤免疫中的PD-1 抑制信号第19-21页
   ·PD-1 和PD-L1 分子的表达第19页
   ·PD-1 抑制T细胞活性的机制第19-21页
 3 本课题研究方案及目的第21-22页
   ·研究方案第21页
   ·本课题的研究目的第21-22页
第二章 重组腺病毒载体Ad35-anti-PD-1 的构建、鉴定、扩增及滴度测定第22-51页
 1 前言第22-23页
 2 实验器材第23-27页
   ·实验材料第23页
   ·实验仪器第23页
   ·实验试剂第23-24页
   ·实验所需引物第24-25页
   ·实验试剂的配置第25-27页
 3 实验方法第27-42页
   ·pCB218-anti-PD-1 的构建第27-35页
   ·Ad35-anti-PD-1 的重组、扩增和纯化第35-42页
 4 实验结果第42-49页
   ·pCB218-anti-PD-1 的构建结果第42-47页
   ·重组腺病毒Ad35-anti-PD-1 鉴定第47-49页
   ·重组腺病毒Ad-anti-PD-1 的滴度测定第49页
 5 讨论第49-50页
 6 总结第50-51页
第三章 PD-1 抗体的表达、检测和纯化第51-63页
 1 前言第51页
 2 实验器材第51-55页
   ·实验材料第51页
   ·实验仪器第51-52页
   ·实验试剂第52-53页
   ·主要试剂配置方法第53-55页
 3 实验方法第55-58页
   ·Ad35-anti-PD-1 感染 293 细胞第55页
   ·Elisa检测PD-1 抗体的表达量第55-56页
   ·Western blotting检测PD-1 抗体重链和轻链的分子量第56-57页
   ·PD-1 抗体的Protein G纯化第57-58页
   ·考马斯亮蓝检测纯化的PD-1 抗体的纯度第58页
   ·ELISA检测纯化的PD-1 抗体的浓度第58页
 4 实验结果第58-61页
   ·293 细胞上清中PD-1 抗体的表达量第58-60页
   ·PD-1 抗体重链和轻链的鉴定第60-61页
   ·纯化后的PD-1 抗体纯度检测第61页
   ·纯化的PD-1 抗体的浓度第61页
 5 讨论第61-62页
 6 小结第62-63页
第四章 PD-1 信号被阻断的CTL对肿瘤细胞的杀伤第63-74页
 1 前言第63页
 2 实验器材第63-65页
   ·实验材料第63页
   ·实验器材第63-64页
   ·实验试剂第64页
   ·实验试剂的配置第64-65页
 3 实验方法第65-68页
   ·外周血单个核细胞的分离第65页
   ·提呈TP53 抗原的成熟DC的培养第65-66页
   ·尼龙毛柱法分离T淋巴细胞第66页
   ·Westernblotting检测成熟DC中TP53 的表达第66页
   ·流式细胞术检测成熟DC的表型第66-67页
   ·混合淋巴细胞反应第67页
   ·ELISPOT检测p53 特异性的CTL IFN-γ的分泌第67-68页
   ·PD-1 信号阻断的TP 53 特异性的CTL对肿瘤细胞的体外杀伤第68页
 4 实验结果第68-73页
   ·成熟DC的形态鉴定第68-69页
   ·成熟DC的表型第69-70页
   ·成熟DC中TP53 表达的检测第70页
   ·TP53 特异性的CTL IFN-γ分泌的检测第70-71页
   ·PD-1 信号阻断的 TP53 特异性的CTL对肿瘤细胞的体外杀伤第71-73页
 5 讨论第73页
 6 小结第73-74页
第五章 结论第74-75页
参考文献第75-81页
致谢第81-82页
附录第82页

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