中文摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
缩略词表 | 第11-12页 |
目录 | 第12-16页 |
第一章 绪论 | 第16-22页 |
1 CTL的过继细胞治疗 | 第16-19页 |
·CTL的分群 | 第16页 |
·活化 CTL的特异性抗原 | 第16-17页 |
·CTL特异性抗肿瘤的机制 | 第17-18页 |
·CTL的体外培养 | 第18页 |
·CTL的临床应用及提高疗效的途径 | 第18-19页 |
2 抗肿瘤免疫中的PD-1 抑制信号 | 第19-21页 |
·PD-1 和PD-L1 分子的表达 | 第19页 |
·PD-1 抑制T细胞活性的机制 | 第19-21页 |
3 本课题研究方案及目的 | 第21-22页 |
·研究方案 | 第21页 |
·本课题的研究目的 | 第21-22页 |
第二章 重组腺病毒载体Ad35-anti-PD-1 的构建、鉴定、扩增及滴度测定 | 第22-51页 |
1 前言 | 第22-23页 |
2 实验器材 | 第23-27页 |
·实验材料 | 第23页 |
·实验仪器 | 第23页 |
·实验试剂 | 第23-24页 |
·实验所需引物 | 第24-25页 |
·实验试剂的配置 | 第25-27页 |
3 实验方法 | 第27-42页 |
·pCB218-anti-PD-1 的构建 | 第27-35页 |
·Ad35-anti-PD-1 的重组、扩增和纯化 | 第35-42页 |
4 实验结果 | 第42-49页 |
·pCB218-anti-PD-1 的构建结果 | 第42-47页 |
·重组腺病毒Ad35-anti-PD-1 鉴定 | 第47-49页 |
·重组腺病毒Ad-anti-PD-1 的滴度测定 | 第49页 |
5 讨论 | 第49-50页 |
6 总结 | 第50-51页 |
第三章 PD-1 抗体的表达、检测和纯化 | 第51-63页 |
1 前言 | 第51页 |
2 实验器材 | 第51-55页 |
·实验材料 | 第51页 |
·实验仪器 | 第51-52页 |
·实验试剂 | 第52-53页 |
·主要试剂配置方法 | 第53-55页 |
3 实验方法 | 第55-58页 |
·Ad35-anti-PD-1 感染 293 细胞 | 第55页 |
·Elisa检测PD-1 抗体的表达量 | 第55-56页 |
·Western blotting检测PD-1 抗体重链和轻链的分子量 | 第56-57页 |
·PD-1 抗体的Protein G纯化 | 第57-58页 |
·考马斯亮蓝检测纯化的PD-1 抗体的纯度 | 第58页 |
·ELISA检测纯化的PD-1 抗体的浓度 | 第58页 |
4 实验结果 | 第58-61页 |
·293 细胞上清中PD-1 抗体的表达量 | 第58-60页 |
·PD-1 抗体重链和轻链的鉴定 | 第60-61页 |
·纯化后的PD-1 抗体纯度检测 | 第61页 |
·纯化的PD-1 抗体的浓度 | 第61页 |
5 讨论 | 第61-62页 |
6 小结 | 第62-63页 |
第四章 PD-1 信号被阻断的CTL对肿瘤细胞的杀伤 | 第63-74页 |
1 前言 | 第63页 |
2 实验器材 | 第63-65页 |
·实验材料 | 第63页 |
·实验器材 | 第63-64页 |
·实验试剂 | 第64页 |
·实验试剂的配置 | 第64-65页 |
3 实验方法 | 第65-68页 |
·外周血单个核细胞的分离 | 第65页 |
·提呈TP53 抗原的成熟DC的培养 | 第65-66页 |
·尼龙毛柱法分离T淋巴细胞 | 第66页 |
·Westernblotting检测成熟DC中TP53 的表达 | 第66页 |
·流式细胞术检测成熟DC的表型 | 第66-67页 |
·混合淋巴细胞反应 | 第67页 |
·ELISPOT检测p53 特异性的CTL IFN-γ的分泌 | 第67-68页 |
·PD-1 信号阻断的TP 53 特异性的CTL对肿瘤细胞的体外杀伤 | 第68页 |
4 实验结果 | 第68-73页 |
·成熟DC的形态鉴定 | 第68-69页 |
·成熟DC的表型 | 第69-70页 |
·成熟DC中TP53 表达的检测 | 第70页 |
·TP53 特异性的CTL IFN-γ分泌的检测 | 第70-71页 |
·PD-1 信号阻断的 TP53 特异性的CTL对肿瘤细胞的体外杀伤 | 第71-73页 |
5 讨论 | 第73页 |
6 小结 | 第73-74页 |
第五章 结论 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-81页 |
致谢 | 第81-82页 |
附录 | 第82页 |