| 中文摘要 | 第1-13页 |
| Abstract | 第13-17页 |
| 1 前言 | 第17-32页 |
| ·卵母细胞老化引起的危害 | 第17页 |
| ·卵母细胞老化过程中超微结构的变化 | 第17-19页 |
| ·线粒体 | 第17-18页 |
| ·细胞骨架 | 第18-19页 |
| ·皮质颗粒 | 第19页 |
| ·老化卵母细胞孤雌激活率的变化 | 第19-20页 |
| ·老化卵母细胞的钙离子波动 | 第20-21页 |
| ·卵母细胞老化与细胞凋亡 | 第21-22页 |
| ·低温对卵母细胞的影响 | 第22-23页 |
| ·卵母细胞老化的调节 | 第23-30页 |
| ·MPF 调节卵母细胞的老化 | 第23-25页 |
| ·MAPK 调节卵母细胞的老化 | 第25-26页 |
| ·抗氧化剂调节卵母细胞的老化 | 第26-29页 |
| ·卵丘细胞调节卵母细胞的老化 | 第29-30页 |
| ·本文的研究目的和意义 | 第30-32页 |
| 2 材料与方法 | 第32-37页 |
| ·主要试剂及配制 | 第32-33页 |
| ·实验动物及超排处理 | 第33页 |
| ·体内成熟卵母细胞的获取 | 第33页 |
| ·裸卵的制备 | 第33页 |
| ·卵母细胞体外老化处理 | 第33页 |
| ·乙醇结合 6-DMAP 激活 | 第33-34页 |
| ·SrCl_2激活处理 | 第34页 |
| ·胚胎培养 | 第34页 |
| ·皮质颗粒染色 | 第34-35页 |
| ·卵母细胞纺锤体（α－微管蛋白）染色 | 第35页 |
| ·Bcl-2 蛋白染色 | 第35页 |
| ·激光扫描共聚焦显微术 | 第35页 |
| ·实验设计 | 第35-36页 |
| ·数据统计分析 | 第36-37页 |
| 3 结果与分析 | 第37-68页 |
| ·不同温度下 MG132 抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第37-39页 |
| ·37 ℃时 MG132 抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第37-38页 |
| ·25 ℃时 MG132 抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第38-39页 |
| ·15 ℃时 MG132 抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第39页 |
| ·不同温度下 MG132 处理卵母细胞恢复后的发育情况 | 第39-43页 |
| ·37 ℃时 MG132 处理卵母细胞恢复后的发育 | 第39-42页 |
| ·25 ℃时 MG132 处理卵母细胞恢复后的发育 | 第42页 |
| ·15 ℃时 MG132 处理卵母细胞恢复后的发育 | 第42-43页 |
| ·MG132 对卵母细胞纺锤体形态和皮质颗粒分布以及 Bcl-2 蛋白水平的影响 | 第43-46页 |
| ·不同温度下咖啡因抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第46-48页 |
| ·37 ℃时咖啡因抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第46页 |
| ·25 ℃时咖啡因抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第46-47页 |
| ·15 ℃时咖啡因抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第47-48页 |
| ·不同温度下咖啡因处理卵母细胞恢复后的发育情况 | 第48-51页 |
| ·37 ℃时咖啡因处理卵母细胞恢复后的发育 | 第48-50页 |
| ·15 ℃时咖啡因处理卵母细胞恢复后的发育 | 第50-51页 |
| ·不同温度下半胱胺和胱氨酸抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第51-53页 |
| ·37 ℃时半胱胺和胱氨酸抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第51-52页 |
| ·25 ℃时半胱胺和胱氨酸抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第52-53页 |
| ·15 ℃时半胱胺和胱氨酸抑制卵母细胞老化所需要的浓度 | 第53页 |
| ·不同温度下半胱胺和胱氨酸处理卵母细胞恢复后的发育情况 | 第53-59页 |
| ·37 ℃时半胱胺和胱氨酸处理卵母细胞恢复后的发育 | 第53-57页 |
| ·25 ℃时半胱胺和胱氨酸处理卵母细胞恢复后的发育 | 第57-58页 |
| ·15 ℃时半胱胺和胱氨酸处理卵母细胞恢复后的发育 | 第58页 |
| ·15 ℃时 Vc 处理卵母细胞恢复后的发育 | 第58-59页 |
| ·抗氧化剂对卵母细胞纺锤体形态和皮质颗粒分布以及 Bcl-2 蛋白水平的影响 | 第59-64页 |
| ·半胱胺和胱氨酸对卵母细胞纺锤体形态和皮质颗粒分布以及 Bcl-2 蛋白水平的影响 | 第59-61页 |
| ·Vc 对卵母细胞纺锤体形态和皮质颗粒分布以及 Bcl-2 蛋白水平的影响 | 第61-64页 |
| ·半胱胺和胱氨酸结合其他老化抑制剂处理卵母细胞恢复后的发育情况 | 第64-65页 |
| ·冈田酸对排卵后卵母细胞体外老化的调控 | 第65-67页 |
| ·抑制卵母细胞老化所需要的冈田酸浓度 | 第65-66页 |
| ·冈田酸抑制卵母细胞老化的可逆性 | 第66-67页 |
| ·卵丘细胞在冈田酸抑制卵母细胞老化过程中的作用 | 第67-68页 |
| 4 讨论 | 第68-80页 |
| ·培养液的选择 | 第68页 |
| ·选择 COC 作为实验的模型 | 第68页 |
| ·OA 对卵母细胞老化的调控 | 第68-70页 |
| ·低温对卵母细胞老化的抑制作用 | 第70-71页 |
| ·MG132 处理后对卵母细胞老化的影响 | 第71-72页 |
| ·咖啡因处理后对卵母细胞老化的影响 | 第72-74页 |
| ·抗氧化剂对小鼠卵母细胞老化的调控 | 第74-77页 |
| ·半胱胺和胱氨酸对小鼠卵母细胞老化的调控 | 第74-75页 |
| ·维生素 C 对小鼠卵母细胞老化的调控 | 第75-76页 |
| ·低的孤雌激活率和维持发育能力是保存卵母细胞的条件 | 第76-77页 |
| ·15 ℃时抑制卵母细胞老化对纺锤体形态和皮质颗粒分布以及 Bcl-2 蛋白水平的影响 | 第77-80页 |
| ·抑制卵母细胞老化对纺锤体形态的影响 | 第77-78页 |
| ·抑制卵母细胞老化对皮质颗粒分布的影响 | 第78页 |
| ·抑制卵母细胞老化对抗凋亡蛋白 Bcl-2 水平的影响 | 第78-80页 |
| 5 结论 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-95页 |
| 附录 | 第95-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
| 作者简介 | 第98页 |
