| 学位论文数据集 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第17-29页 |
| 1.1 磁性纳米/亚微球的研究现状 | 第17页 |
| 1.2 超顺磁性Fe_3O_4纳米/亚微米球制备 | 第17-20页 |
| 1.2.1 共沉淀法 | 第17-18页 |
| 1.2.2 水解法 | 第18页 |
| 1.2.3 水热法 | 第18-19页 |
| 1.2.4 溶胶-凝胶法 | 第19页 |
| 1.2.5 微乳液法 | 第19-20页 |
| 1.3 磁性纳米/亚微米粒子的常用表征方法 | 第20-21页 |
| 1.3.1 纳米/亚微米微粒的形貌分析 | 第20页 |
| 1.3.2 纳米/亚微米微粒的表面分析 | 第20页 |
| 1.3.3 纳米/亚微米微粒的磁性分析 | 第20-21页 |
| 1.4 超顺磁性Fe_3O_4亚微球的表面修饰 | 第21-22页 |
| 1.4.1 磁性复合粒子的结构 | 第22页 |
| 1.5 超顺磁性Fe_3O_4纳米/亚微米粒子应用 | 第22-26页 |
| 1.5.1 固定化酶 | 第22-23页 |
| 1.5.2 靶向治疗 | 第23页 |
| 1.5.3 磁性复合粒子在污染物处理中的应用 | 第23-24页 |
| 1.5.4 磁性复合杀菌剂的应用 | 第24页 |
| 1.5.5 磁性复合粒子在核酸分离纯化中的应用 | 第24-26页 |
| 1.5.5.1 核酸分离纯化常用方法 | 第25页 |
| 1.5.5.2 用于分离纯化核酸的复合粒子 | 第25-26页 |
| 1.6 论文的主要研究内容 | 第26-29页 |
| 1.6.1 选题意义 | 第26页 |
| 1.6.2 主要研究内容 | 第26-29页 |
| 第二章 Fe_3O_4磁性亚微球的放大制备与表征 | 第29-41页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 主要实验试剂和仪器 | 第29-30页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第29-30页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-31页 |
| 2.3.1 Fe_3O_4磁性纳米亚微球动态反应釜放大制备 | 第30-31页 |
| 2.3.1.1 反应物加入量对Fe_3O_4磁性亚微球合成的影响 | 第30页 |
| 2.3.1.2 反应温度对Fe_3O_4磁性亚微球合成的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.1.3 反应时间对Fe_3O_4磁性亚微球合成的影响 | 第31页 |
| 2.3.1.4 搅拌速率对Fe_3O_4磁性亚微球合成的影响 | 第31页 |
| 2.4 实验结果分析与讨论 | 第31-38页 |
| 2.4.1 不同反应物加入量合成Fe_3O_4磁性亚微球的SEM表征 | 第31-32页 |
| 2.4.2 不同温度下合成Fe_3O_4磁性亚微球的SEM表征 | 第32页 |
| 2.4.3 不同反应时间合成磁性亚微球的SEM表征 | 第32-33页 |
| 2.4.4 不同搅拌速率下合成Fe_3O_4磁性亚微球的SEM表征 | 第33-34页 |
| 2.4.5 最佳成球条件下Fe_3O_4磁性亚微球表征 | 第34-38页 |
| 2.4.5.1 最佳成球条件下Fe_3O_4磁性亚微球的TEM表征 | 第34-35页 |
| 2.4.5.2 最佳成球条件下Fe_3O_4磁性亚微球的FT-IR表征 | 第35-36页 |
| 2.4.5.3 最佳反应条件下合成磁性亚微球的XRD表征 | 第36-37页 |
| 2.4.5.4 最佳反应条件下合成磁性亚微球的能谱分析 | 第37-38页 |
| 2.4.5.5 最佳反应条件下合成磁性亚微球的VSM表征 | 第38页 |
| 2.5 本章小结 | 第38-41页 |
| 第三章 杀菌剂Fe_3O_4@CTAC的制备及无残留杀菌的研究 | 第41-55页 |
| 3.1 引言 | 第41页 |
| 3.2 主要实验试剂和仪器 | 第41-42页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第41-42页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第42页 |
| 3.3 实验方法 | 第42-45页 |
| 3.3.1 Fe_3O_4磁性纳米亚微球表面油酸修饰 | 第42页 |
| 3.3.2 油酸修饰的Fe_3O_4亚微球固定季铵盐 | 第42页 |
| 3.3.3 Fe_3O_4@CTAC杀菌效果 | 第42-45页 |
| 3.3.3.1 Fe_3O_4@CTAC使用量对大肠杆菌、枯草芽孢杆菌、金黄色葡萄球菌的杀菌效果的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.3.2 不同作用时间对大肠杆菌、枯草芽孢杆菌、金黄色葡萄球菌效果的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.3.3 不同作用时间对酵母菌效果的影响 | 第44页 |
| 3.3.3.4 杀菌批次反应对Fe_3O_4@CTAC杀菌效果的影响 | 第44-45页 |
| 3.4 实验结果分析与讨论 | 第45-54页 |
| 3.4.1 Fe_3O_4@CTAC对细菌的杀菌效果的影响 | 第45-50页 |
| 3.4.1.1 不同杀菌剂浓度对细菌的杀菌效果的影响 | 第45-47页 |
| 3.4.1.2 不同反应时间对细菌的杀菌效果的影响 | 第47-50页 |
| 3.4.2 Fe_3O_4@CTAC对真菌(酵母菌)的杀菌效果的影响 | 第50-51页 |
| 3.4.2.1 不同反应时间对酵母菌的杀菌效果的影响 | 第50-51页 |
| 3.4.3 使用批次Fe_3O_4@CTAC杀菌效果的影响 | 第51页 |
| 3.4.4 Fe_3O_4@CTAC和Fe_3O_4的抑菌实验 | 第51-53页 |
| 3.4.5 反应液中菌体及CTAC的残留分析 | 第53-54页 |
| 3.5 本章小结 | 第54-55页 |
| 第四章 Fe_3O_4@SiO_2的制备及DNA分离试剂盒的研究 | 第55-69页 |
| 4.1 引言 | 第55-56页 |
| 4.2 主要实验试剂与仪器 | 第56-57页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第56-57页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第57页 |
| 4.3 实验方法 | 第57-61页 |
| 4.3.1 磁性复合粒子Fe_3O_4@SiO_2的放大制备[60] | 第57-58页 |
| 4.3.2 Fe_3O_4@SiO_2的制备DNA分离试剂盒 | 第58-61页 |
| 4.3.2.1 溶液的配制 | 第58-59页 |
| 4.3.2.2 细菌的培养 | 第59页 |
| 4.3.2.3 Fe_3O_4@SiO_2磁性亚微米粒子提取质粒DNA | 第59-60页 |
| 4.3.2.4 Fe_3O_4@SiO_2磁性亚微米粒子提取质粒DNA的PCR实验 | 第60页 |
| 4.3.2.5 Fe_3O_4@SiO_2磁性亚微米粒子提取质粒DNA的胶回收实验 | 第60页 |
| 4.3.2.6 核酸浓度及纯度的鉴定 | 第60页 |
| 4.3.2.7 质粒DNA琼脂糖电泳 | 第60-61页 |
| 4.4 实验结果分析与讨论 | 第61-67页 |
| 4.4.1 不同反应物添加量合成Fe_3O_4@SiO_2的SEM表征 | 第61-62页 |
| 4.4.2 不同搅拌速率合成Fe_3O_4@SiO_2的SEM表征 | 第62-63页 |
| 4.4.3 Fe_3O_4@SiO_2的TEM表征 | 第63页 |
| 4.4.4 Fe_3O_4@SiO_2的FT-IR表征 | 第63-64页 |
| 4.4.5 Fe_3O_4@SiO_2的XRD表征 | 第64-65页 |
| 4.4.6 Fe-3O_4@SiO_2的VSM表征 | 第65页 |
| 4.4.7 Fe_3O_4@SiO_2对质粒DNA提取电泳 | 第65-66页 |
| 4.4.8 质粒DNA的PCR实验结果 | 第66-67页 |
| 4.4.9 质粒DNA的胶回收实验结果 | 第67页 |
| 4.5 本章小结 | 第67-69页 |
| 第五章 结论与创新点 | 第69-71页 |
| 5.1 结论 | 第69-70页 |
| 5.2 创新点 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-75页 |
| 附录 | 第75-77页 |
| 致谢 | 第77-79页 |
| 研究成果及发表的论文 | 第79-81页 |
| 作者及导师简介 | 第81-83页 |
| 专业学位硕士研究生学位论文答辩委员会决议书 | 第83-84页 |
