| 摘要 | 第1-14页 |
| ABSTRACT | 第14-18页 |
| 术语和缩略表 | 第18-20页 |
| 第一章 文献综述 | 第20-46页 |
| 1 我国农药工业概况 | 第20-21页 |
| 2 酰胺类除草剂在土壤中的行为 | 第21-25页 |
| ·除草剂草萘胺的基本特点 | 第21-23页 |
| ·物理化学性质 | 第21-22页 |
| ·毒性和代谢 | 第22-23页 |
| ·作用方式及使用特点 | 第23页 |
| ·酰胺类除草剂在土壤中的行为 | 第23-25页 |
| ·土壤中的降解及影响因素 | 第23-24页 |
| ·土壤中的吸附与解吸 | 第24-25页 |
| 3 农药对土壤微生物活性的影响 | 第25-30页 |
| ·农药对土壤微生物生物量的影响 | 第26-27页 |
| ·农药对土壤微生物碳的影响 | 第26-27页 |
| ·农药对土壤微生物氮的影响 | 第27页 |
| ·农药对土壤呼吸作用的影响 | 第27-28页 |
| ·农药对土壤酶活性的影响 | 第28-30页 |
| 4 农药对土壤微生物群落结构的影响 | 第30-34页 |
| ·土壤微生物群落结构的概念 | 第30页 |
| ·土壤微生物群落结构研究方法 | 第30-31页 |
| ·DGGE方法在土壤微生物群落研究中的应用 | 第31-34页 |
| ·DGGE的测定原理和基本步骤 | 第31-32页 |
| ·DGGE方法在农药对土壤微生物群落影响中的应用 | 第32-34页 |
| 5 农药多残留分析方法研究进展 | 第34-36页 |
| ·农药多残留分析的前处理技术 | 第34-35页 |
| ·固相萃取(SPE) | 第34页 |
| ·固相微萃取(SPME) | 第34页 |
| ·超临界流体萃取技术(SFE) | 第34-35页 |
| ·加速溶剂萃取技术(ASE) | 第35页 |
| ·农药多残留分析的检测方法 | 第35-36页 |
| ·高效液相色谱法(HPLC) | 第35页 |
| ·气相色谱法(GC) | 第35页 |
| ·气相色谱-质谱联用(GC-MS) | 第35-36页 |
| ·液相色谱-质谱联用(LC-MS) | 第36页 |
| 6 本论文的研究目的和研究内容 | 第36-39页 |
| 参考文献 | 第39-46页 |
| 第一部分 草萘胺对土壤环境的影响 | 第46-124页 |
| 第二章 草萘胺在土壤和水中残留检测方法研究 | 第46-58页 |
| 1 材料与方法 | 第46-48页 |
| ·仪器 | 第46页 |
| ·试剂 | 第46页 |
| ·样品 | 第46-47页 |
| ·样品的提取与净化 | 第47-48页 |
| ·土壤样品的提取与净化 | 第47-48页 |
| ·水样的提取与净化 | 第48页 |
| ·样品的检测方法 | 第48页 |
| ·高效液相色谱(HPLC)检测 | 第48页 |
| ·气相色谱-质谱(GC-MS)检测 | 第48页 |
| 2 结果与讨论 | 第48-56页 |
| ·高效液相色谱检测方法 | 第48-50页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第49页 |
| ·检测波长的确定 | 第49-50页 |
| ·流动相的选择 | 第50页 |
| ·气相色谱-质谱检测条件的确立 | 第50-51页 |
| ·标准曲线和最低检出浓度 | 第50页 |
| ·扫描方式的确定 | 第50页 |
| ·色谱柱的选择 | 第50-51页 |
| ·提取方法的优化 | 第51-52页 |
| ·提取溶剂的选择 | 第51-52页 |
| ·不同提取方法的比较 | 第52页 |
| ·净化方法的选择 | 第52-53页 |
| ·土壤和水的添加回收率试验及检测限测定 | 第53-56页 |
| 3 小结 | 第56页 |
| 参考文献 | 第56-58页 |
| 第三章 草萘胺在土壤中的降解研究 | 第58-72页 |
| 1 材料和方法 | 第58-61页 |
| ·供试土壤 | 第58-59页 |
| ·试剂 | 第59页 |
| ·仪器 | 第59页 |
| ·试验设计 | 第59-60页 |
| ·土壤类型对草萘胺降解的影响 | 第59页 |
| ·温度对草萘胺降解的影响 | 第59-60页 |
| ·土壤灭菌与未灭菌对草萘胺的降解的影响 | 第60页 |
| ·土壤理化性质测定方法 | 第60页 |
| ·草萘胺残留量的HPLC测定 | 第60页 |
| ·草萘胺在土壤中降解产物的GC-MS测定 | 第60页 |
| ·数据分析 | 第60-61页 |
| 2 结果与讨论 | 第61-70页 |
| ·土壤类型对草萘胺降解的影响 | 第61-62页 |
| ·温度对草萘胺降解的影响 | 第62-63页 |
| ·土壤灭菌与未灭菌时草萘胺的降解 | 第63-65页 |
| ·土壤理化性质对草萘胺降解的影响 | 第65-66页 |
| ·草萘胺在土壤中降解产物的分析 | 第66-70页 |
| 3 小结 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-72页 |
| 第四章 草萘胺在不同土壤上吸附行为及光谱学研究 | 第72-86页 |
| 1 材料与方法 | 第72-74页 |
| ·供试土壤样品 | 第72页 |
| ·仪器和试剂 | 第72-73页 |
| ·试验设计 | 第73-74页 |
| ·土壤中水溶性有机质(DOM) | 第73页 |
| ·土壤样品的傅立叶变换红外光谱(FT-IR)分析 | 第73页 |
| ·草萘胺在土壤中的吸附实验 | 第73-74页 |
| ·HPLC分析条件 | 第74页 |
| 2 结果与讨论 | 第74-82页 |
| ·草萘胺在三种土壤上的吸附等温线 | 第74-75页 |
| ·偏摩尔自由能的变化 | 第75-76页 |
| ·草萘胺在土壤上的吸附自由能 | 第76-77页 |
| ·土壤性质对吸附的影响 | 第77-78页 |
| ·不同来源的土壤DOM | 第78页 |
| ·不同来源土壤的DOM紫外光谱图 | 第78-79页 |
| ·三种土壤的红外光谱图 | 第79-82页 |
| 3 小结 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-86页 |
| 第五章 草萘胺对土壤微生物生物量和呼吸强度的影响 | 第86-96页 |
| 1 材料与方法 | 第86-89页 |
| ·药剂 | 第86页 |
| ·供试土壤 | 第86-87页 |
| ·仪器设备 | 第87页 |
| ·实验设计与实施 | 第87页 |
| ·土壤微生物生物量 | 第87页 |
| ·土壤微生物呼吸强度 | 第87页 |
| ·土壤微生物生物量的测定 | 第87-88页 |
| ·土壤微生物生物量的测定原理 | 第87-88页 |
| ·土壤微生物生物量C的测定方法 | 第88页 |
| ·土壤微生物生物量N的测定方法 | 第88页 |
| ·土壤基础呼吸作用的测定 | 第88-89页 |
| ·数据分析 | 第89页 |
| 2 结果与讨论 | 第89-94页 |
| ·草萘胺对土壤基础呼吸的影响 | 第89-90页 |
| ·草萘胺对土壤呼吸影响的评价 | 第90-91页 |
| ·草萘胺对土壤微生物生物量C的影响 | 第91-92页 |
| ·草萘胺对土壤微生物生物量N的影响 | 第92-94页 |
| 3 小结 | 第94页 |
| 参考文献 | 第94-96页 |
| 第六章 草萘胺对土壤酶活性的影响 | 第96-110页 |
| 1 材料与方法 | 第96-99页 |
| ·供试土壤 | 第96-97页 |
| ·供试药剂 | 第97页 |
| ·仪器设备 | 第97页 |
| ·试验设计与实施 | 第97页 |
| ·土壤酶活性测定方法 | 第97-99页 |
| ·脱氢酶活性的测定 | 第97-98页 |
| ·过氧化氢酶活性的测定 | 第98页 |
| ·脲酶活性的测定 | 第98页 |
| ·蔗糖酶活性的测定 | 第98-99页 |
| ·数据分析 | 第99页 |
| 2 结果与讨论 | 第99-108页 |
| ·草萘胺对黄棕壤土壤酶活性影响 | 第99-102页 |
| ·草萘胺对脲酶活性的影响 | 第99-100页 |
| ·草萘胺对蔗糖酶活性的影响 | 第100-101页 |
| ·草萘胺对过氧化氢酶活性的影响 | 第101-102页 |
| ·草萘胺对砖红壤土壤酶活性的影响 | 第102-105页 |
| ·草萘胺对脲酶活性的影响 | 第102-103页 |
| ·草萘胺对蔗糖酶活性的影响 | 第103-104页 |
| ·草萘胺对过氧化氢酶活性的影响 | 第104页 |
| ·草萘胺对脱氢酶活性的影响 | 第104-105页 |
| ·草萘胺对黑土土壤酶活性的影响 | 第105-108页 |
| ·草萘胺对脲酶活性的影响 | 第105-106页 |
| ·草萘胺对蔗糖酶活性的影响 | 第106页 |
| ·草萘胺对过氧化氢酶活性的影响 | 第106-107页 |
| ·草萘胺对脱氢酶活性的影响 | 第107-108页 |
| 3 小结 | 第108-109页 |
| 参考文献 | 第109-110页 |
| 第七章 草萘胺对土壤微生物群落结构的DGGE分子指纹分析 | 第110-124页 |
| 1 材料与方法 | 第110-114页 |
| ·仪器与试剂剂 | 第110-111页 |
| ·供试土壤 | 第111页 |
| ·实验设计 | 第111页 |
| ·土壤总DNA提取 | 第111-112页 |
| ·土壤总DNA的回收和纯化 | 第112页 |
| ·PCR扩增 | 第112-114页 |
| ·变性梯度凝胶电泳(DGGE) | 第114页 |
| ·染色 | 第114页 |
| ·指纹图谱分析 | 第114页 |
| 2 结果与讨论 | 第114-120页 |
| ·土壤样品总DNA的提取 | 第114-115页 |
| ·土壤DNA的纯化 | 第115-116页 |
| ·细菌通用引物的PCR扩增 | 第116页 |
| ·草萘胺处理对土壤微生物群落结构的影响 | 第116-120页 |
| ·草萘胺处理7d土壤细菌群落结构的DGGE分析 | 第116-118页 |
| ·草萘胺处理14d土壤细菌群落结构的DGGE分析 | 第118-120页 |
| 3 小结 | 第120-121页 |
| 参考文献 | 第121-124页 |
| 第二部分 农药多残留分析方法研究 | 第124-140页 |
| 第八章 中药材丹参、菊花中农药多残留量检测方法研究 | 第124-134页 |
| 1 材料与方法 | 第124-126页 |
| ·仪器 | 第124页 |
| ·试剂 | 第124-125页 |
| ·供试材料 | 第125页 |
| ·实验方法 | 第125-126页 |
| ·色谱操作条件 | 第125页 |
| ·农药混合标样的配制 | 第125-126页 |
| ·样品的前处理 | 第126页 |
| 2 结果与讨论 | 第126-131页 |
| ·检测器和色谱柱的选择 | 第126-127页 |
| ·提取溶剂的选择 | 第127页 |
| ·固相萃取(SPE) | 第127-128页 |
| ·标准曲线及最低检出浓度 | 第128-129页 |
| ·方法回收率和精密度 | 第129-130页 |
| ·实际样品的测定 | 第130-131页 |
| ·丹参样品的测定 | 第130-131页 |
| ·菊花样品的测定 | 第131页 |
| 3 小结 | 第131-132页 |
| 参考文献 | 第132-134页 |
| 第九章 生鲜牛乳中农药多残留分析方法研究 | 第134-140页 |
| 1 材料与方法 | 第134-135页 |
| ·仪器 | 第134页 |
| ·试剂 | 第134页 |
| ·样品检测方法 | 第134-135页 |
| ·色谱操作条件 | 第134-135页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第135页 |
| ·样品的提取和净化 | 第135页 |
| 2 结果与讨论 | 第135-138页 |
| ·样品前处理方法的选择 | 第135-136页 |
| ·提取溶剂的选择 | 第135页 |
| ·磷酸破乳,使蛋白质沉淀 | 第135页 |
| ·固相萃取(SPE) | 第135-136页 |
| ·色谱分离 | 第136-138页 |
| ·样品的添加回收率 | 第138页 |
| 3 小结 | 第138-139页 |
| 参考文献 | 第139-140页 |
| 全文总结 | 第140-142页 |
| 创新点 | 第142-144页 |
| 附录 | 第144-146页 |
| 攻读博士学位期间发表论文 | 第146-148页 |
| 致谢 | 第148页 |