目录 | 第1-6页 |
图表目录 | 第6-7页 |
中文摘要 | 第7-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
英文略语表 | 第10-12页 |
前言 | 第12-18页 |
第一部分 构建含有WNT信号通路应答元件的质粒 | 第18-32页 |
1 实验材料 | 第18-21页 |
·质粒 | 第18-19页 |
·菌株 | 第19页 |
·工具酶、酶切缓冲液及 DNA Marker | 第19页 |
·主要化学试剂 | 第19页 |
·试剂盒 | 第19页 |
·主要仪器及设备 | 第19-20页 |
·E.coli用培养基的配制 | 第20页 |
·主要溶液配方 | 第20-21页 |
·制备感受态细胞相关溶液 | 第20页 |
·抗生素的配制 | 第20页 |
·大量提取质粒 DNA的相关溶液 | 第20-21页 |
·DNA琼脂糖凝胶电泳缓冲液及凝胶的配制 | 第21页 |
·常用缓冲液的配制 | 第21页 |
2 实验方法 | 第21-26页 |
·单链复性 | 第21-22页 |
·酶切消化 | 第22页 |
·连接 | 第22-23页 |
·转化 | 第23页 |
·鉴定 | 第23-24页 |
·感受态细胞的制备 | 第24页 |
·质粒 DNA的小提 | 第24-25页 |
·质粒 DNA的大量提取 | 第25-26页 |
·重组质粒 DNA浓度的测定 | 第26页 |
·DNA的纯化回收 | 第26页 |
3 实验结果 | 第26-32页 |
·确定并合成 Topflash单链 | 第26-27页 |
·单链复性 | 第27页 |
·反复插入Topflash序列,构建克隆 | 第27页 |
·检测 | 第27-30页 |
·质粒大提 | 第30页 |
·质粒线性化并回收线性化的 DNA | 第30-32页 |
第二部分 构建 WNT信号通路有关的药物筛选细胞模型 | 第32-51页 |
4 实验材料 | 第32-33页 |
·细胞用培养基及血清 | 第32页 |
·氯化锂(LiCl)溶液的配制 | 第32页 |
·佛波酯(TPA)溶液的配制 | 第32页 |
·其它试剂 | 第32页 |
·细胞培养用耗材 | 第32-33页 |
·所用仪器及设备 | 第33页 |
·细胞冻存液的配制 | 第33页 |
·细胞裂解液的配制 | 第33页 |
5 实验方法 | 第33-35页 |
·预实验:瞬时转染 Topflash报告基因质粒的细胞,对刺激的敏感性 | 第33-34页 |
·恒定表达细胞株的构建 | 第34页 |
·细胞冻存 | 第34页 |
·细胞复苏 | 第34-35页 |
·细胞裂解 | 第35页 |
6 实验结果 | 第35-51页 |
·预实验结果:瞬时转染的细胞对氯化锂刺激的反应性 | 第35-36页 |
·瞬时转染 | 第35页 |
·不同浓度的氯化锂溶液刺激 | 第35-36页 |
·挑选细胞单克隆 | 第36页 |
·利用荧光显微镜进行第一次筛查 | 第36-37页 |
·利用流式细胞术进行第二次筛查 | 第37页 |
·再次利用流式细胞术进行第三次筛查 | 第37-38页 |
·细胞的冻存 | 第38页 |
·通过反复传代检测细胞株的稳定性 | 第38-41页 |
·反复传代后通过荧光显微镜进行检测 | 第38-41页 |
·反复传代后通过流式细胞术进行检测 | 第41页 |
·通过细胞的冻存与复苏检测细胞株的稳定性 | 第41页 |
·通过荧光分光光度计测定细胞模型的 EC50 | 第41-48页 |
·药物筛选细胞模型的适用性(一)——佛波酯激活WNT通路 | 第48-49页 |
·佛波酯(TPA)对WNT通路的作用 | 第48页 |
·加入细胞,检测 TPA对筛选细胞模型的影响 | 第48-49页 |
·药物筛选细胞模型的适用性(二)——化合物对WNT通路的影响 | 第49-50页 |
·化合物样品的准备 | 第49页 |
·细胞的准备 | 第49页 |
·加样检测 | 第49-50页 |
·药物筛选细胞模型的适用性(三)——寻找WNT抑制剂作为新的抗癌症药物 | 第50-51页 |
·候选药物 | 第50页 |
·实验准备 | 第50-51页 |
讨论 | 第51-54页 |
小结 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-63页 |
第三部分 研究生期间其他主要研究工作 | 第63-64页 |
个人简历 | 第64-66页 |
致谢 | 第66-69页 |