大豆子叶节高效再生体系的建立与GmCOI1基因的遗传转化
独创性声明 | 第1页 |
关于论文使用授权的说明 | 第3-4页 |
摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
第一章 前言 | 第10-22页 |
1 大豆再生体系 | 第10-13页 |
·大豆器官发生再生体系 | 第10-11页 |
·大豆体细胞胚胎发生再生体系 | 第11-12页 |
·大豆原生质体再生体系 | 第12-13页 |
·大豆花粉、花药再生体系 | 第13页 |
2 大豆遗传转化方法 | 第13-17页 |
·农杆菌介导法 | 第13-16页 |
·大豆易感性研究 | 第13-14页 |
·农杆菌菌株 | 第14页 |
·酚类化合物及其它因素对农杆菌介导转化的影响 | 第14页 |
·农杆菌介导的大豆遗传转化研究 | 第14-16页 |
·基因枪法 | 第16页 |
·PEG介导法 | 第16页 |
·电激法 | 第16-17页 |
·花粉管通道法 | 第17页 |
·显微注射法 | 第17页 |
3 大豆转基因的应用 | 第17-19页 |
·抗病虫害基因 | 第17-18页 |
·品质改良基因 | 第18页 |
·其它方面的应用 | 第18-19页 |
4 大豆转基因研究的发展方向 | 第19-20页 |
·建立高效的大豆转基因受体系统 | 第19页 |
·转基因方法的优化和创新 | 第19页 |
·目的基因的选择 | 第19页 |
·筛选标记基因的改造 | 第19-20页 |
·外源基因表达的稳定性 | 第20页 |
5 COI1基因 | 第20页 |
6 GmCOI1基因 | 第20-21页 |
7 本研究的目的和意义 | 第21-22页 |
第二章 大豆子叶节高效再生体系的建立 | 第22-31页 |
1 材料与方法 | 第22-23页 |
·材料 | 第22页 |
·大豆品种 | 第22页 |
·培养基 | 第22页 |
·试剂 | 第22页 |
·方法 | 第22-23页 |
·大豆无菌苗的获得 | 第22页 |
·诱导丛生芽培养基激素浓度筛选 | 第22-23页 |
·丛生芽诱导生根激素浓度筛选 | 第23页 |
·试管苗的移栽 | 第23页 |
2 结果与分析 | 第23-29页 |
·消毒方式和接种方式对种子萌发的影响 | 第23-24页 |
·萌发天数对丛生芽分化的影响 | 第24页 |
·不同萌发培养基对丛生芽分化的影响 | 第24-25页 |
·外植体大小对子叶节丛生芽分化的影响 | 第25-26页 |
·不同诱导培养基对丛生芽分化的影响 | 第26-27页 |
·IBA浓度对大豆子叶节丛生芽生根的影响 | 第27-29页 |
3 讨论与结论 | 第29-31页 |
·种子的消毒 | 第29页 |
·激素浓度的筛选 | 第29-30页 |
·外植体的褐变 | 第30页 |
·试管苗的移栽 | 第30页 |
·结论 | 第30-31页 |
第三章 GmCOI1基因的遗传转化 | 第31-45页 |
1 材料与方法 | 第31-36页 |
·材料 | 第31-33页 |
·质粒及农杆菌菌株 | 第31页 |
·仪器设备 | 第31页 |
·受体品种 | 第31页 |
·实验用培养基 | 第31-32页 |
·LB培养基 | 第31页 |
·转化用培养基 | 第31-32页 |
·抗生素及生化试剂 | 第32页 |
·DNA提取试剂 | 第32-33页 |
·植物DNA抽提液 | 第32-33页 |
·质粒DNA抽提液 | 第33页 |
·方法 | 第33-36页 |
·抗生素浓度的筛选 | 第33页 |
·农杆菌的活化 | 第33-34页 |
·转化受体的准备 | 第34页 |
·农杆菌介导的大豆子叶节遗传转化 | 第34页 |
·再生植株的PCR检测 | 第34-36页 |
2 结果与分析 | 第36-41页 |
·Kan筛选浓度的确定 | 第36-38页 |
·预培养时间对大豆子叶节转化的影响 | 第38页 |
·农杆菌侵染和共培养时间对子叶节转化的影响 | 第38-39页 |
·AS添加方式对子叶节转化的影响 | 第39-40页 |
·洗菌方法对抑菌的影响 | 第40-41页 |
·PCR检测结果 | 第41页 |
3 讨论 | 第41-45页 |
·外植体的预培养 | 第42页 |
·农杆菌侵染时间和共培养时间 | 第42页 |
·AS的使用 | 第42-43页 |
·选择的时期和方法 | 第43页 |
·二次筛选 | 第43-44页 |
·遗传转化存在的问题 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-51页 |
缩写词及英汉对照 | 第51-52页 |
图版 | 第52-53页 |
图版说明 | 第53-54页 |
致谢 | 第54-55页 |
作者简介 | 第55页 |