中文摘要 | 第1-10页 |
英文摘要 | 第10-12页 |
1 引言 | 第12-26页 |
·花生转基因研究的意义 | 第12-13页 |
·花生再生技术体系 | 第13-18页 |
·器官发生途径的植株再生 | 第13-16页 |
·体细胞胚胎发生途径的植株再生 | 第16-18页 |
·花生遗传转化的研究进展 | 第18-23页 |
·农杆菌介导的遗传转化法 | 第18-21页 |
·基因枪介导法 | 第21-22页 |
·电击穿孔法基因转化 | 第22-23页 |
·微注射法和花粉管通道法的基因转化 | 第23页 |
·花生组织培养与转基因研究存在的主要问题 | 第23-24页 |
·花生组织培养再生体系需进一步优化 | 第23-24页 |
·花生遗传转化体系有待完善 | 第24页 |
·本研究的主要内容和目标 | 第24-26页 |
2 材料与方法 | 第26-34页 |
·试验材料 | 第26-27页 |
·植物材料 | 第26页 |
·菌株与质粒 | 第26-27页 |
·试验方法 | 第27-34页 |
·花生体细胞胚胎发生途径植株再生体系的研究试验 | 第27-29页 |
·培养基的制备 | 第27页 |
·外植体的准备 | 第27页 |
·2 ,4 - D 浓度和基因型对胚小叶植株再生的影响 | 第27-28页 |
·2 ,4 - D 诱导时间对胚小叶植株再生的影响 | 第28页 |
·高浓度2,4-D 培养基继代对胚性愈伤组织分化的影响 | 第28页 |
·不同分化培养基对胚性愈伤再分化的影响 | 第28-29页 |
·毒锈定( P i c ) 对胚小叶植株再生的影响 | 第29页 |
·农杆菌介导花生基因转化体系的研究试验 | 第29-34页 |
·花生胚性愈伤组织的培养 | 第29页 |
·农杆菌培养与胚性愈伤组织的侵染 | 第29页 |
·筛选转npt II 基因的胚性愈伤组织所用 Kan 适宜浓度的研究 | 第29-30页 |
·预培养时间对转化率的影响 | 第30页 |
·菌液浓度对转化率的影响 | 第30页 |
·侵染时间对转化率的影响 | 第30页 |
·转基因花生的分子生物学鉴定 | 第30-34页 |
·含目的基因质粒 DNA 的制备 | 第30-31页 |
·花生基因组 DNA 的提取 | 第31页 |
·转基因植株的 PCR 扩增 | 第31-33页 |
·琼脂糖凝胶电泳法检测 P C R 产物 | 第33-34页 |
3 结果与分析 | 第34-46页 |
·花生胚小叶体细胞胚胎发生途径植株再生体系的建立 | 第34-41页 |
·2 ,4 - D 浓度和基因型对胚小叶植株再生的影响 | 第34-37页 |
·对胚小叶胚性愈伤诱导率的影响 | 第34页 |
·对胚小叶胚性愈伤褐化率的影响 | 第34-35页 |
·对胚小叶植株再生的影响 | 第35-37页 |
·2 ,4 - D 诱导时对胚小叶植株再生的影响 | 第37-38页 |
·高浓度2 ,4 - D 培养基继代对胚性愈伤组织分化的影响 | 第38-39页 |
·不同分化培养基对胚性愈伤组织分化和植株再生的影响 | 第39-40页 |
·毒锈定( P i c ) 对胚小叶植株再生的影响 | 第40-41页 |
·优化的花生胚小叶植株再生技术体系 | 第41页 |
·农杆菌介导花生基因转化技术体系的优化 | 第41-46页 |
·筛选转npt II 基因的胚性愈伤组织所用 Kan 适宜浓度 | 第41页 |
·预培养时间对转化率的影响 | 第41-42页 |
·菌液浓度对转化率的影响 | 第42-43页 |
·侵染时间对转化率的影响 | 第43页 |
·优化的花生基因转化体系 | 第43-44页 |
·转基因植株的 P C R 分析 | 第44-46页 |
4 讨论 | 第46-49页 |
·影响花生胚小叶植株再生的主要因素分析 | 第46页 |
·本研究建立的再生体系的评价 | 第46-47页 |
·影响花生胚性愈伤组织基因转化效率的主要因素分析 | 第47-48页 |
·本研究的创新点 | 第48-49页 |
5 结论 | 第49-51页 |
·花生胚胎发生途径植株再生的适宜条件 | 第49页 |
·农杆菌侵染花生胚性愈伤进行基因转化的适宜条件 | 第49-50页 |
·转 R s - a f p l 基因花生植株的获得 | 第50页 |
·农杆菌侵染花生胚性愈伤组织进行基因转化的技术规程 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-59页 |
附录 | 第59-63页 |
致谢 | 第63-64页 |
攻读学位期间发表论文情况表 | 第64-65页 |
图版 | 第65页 |