| 第一章 文献综述和立项依据 | 第1-39页 |
| 第一节 螺旋藻多糖的研究概况 | 第11-37页 |
| 1 多糖的研究概述 | 第11-14页 |
| 2 藻类多糖的组成结构与生物功能研究 | 第14-32页 |
| 3 藻类多糖的提取、分离纯化和结构研究 | 第32-35页 |
| 4 目前多糖研究中存在的问题 | 第35-37页 |
| 第二节 研究课题的提出及立项依据 | 第37-39页 |
| 第二章 钝顶螺旋藻多糖提取工艺、分离纯化及化学结构的研究 | 第39-75页 |
| 第一节 钝顶螺旋藻多糖提取工艺的研究 | 第42-51页 |
| 1 材料和方法 | 第42-45页 |
| ·材料 | 第42-43页 |
| ·方法 | 第43-45页 |
| 2 结果 | 第45-49页 |
| ·提取率、样品糖含量和蛋白含量测定的结果 | 第46页 |
| ·提取率、样品糖含量和蛋白含量的极差分析结果 | 第46-47页 |
| ·提取率、样品糖含量和蛋白含量的方差分析结果 | 第47-49页 |
| 3 讨论 | 第49-51页 |
| 第二节 钝顶螺旋藻粗多糖的分离纯化 | 第51-59页 |
| 1 材料和方法 | 第51-54页 |
| ·材料 | 第51-52页 |
| ·方法 | 第52-54页 |
| 2 结果 | 第54-58页 |
| ·psp粗糖的Superdex-75凝胶柱层析结果 | 第54-55页 |
| ·各多糖组分分子量的测定结果 | 第55-56页 |
| ·各多糖组分与NaCl、NaN_3混合物的脱盐结果 | 第56页 |
| ·psp2多糖组分纯度的鉴定结果 | 第56-58页 |
| 3 讨论 | 第58-59页 |
| 第三节 psp2多糖组分的微波降解 | 第59-65页 |
| 1 材料和方法 | 第59-61页 |
| ·材料 | 第59页 |
| ·方法 | 第59-61页 |
| 2 结果 | 第61-63页 |
| ·psp2多糖组分的微波降解结果 | 第61页 |
| ·psp5分子量的测定结果 | 第61页 |
| ·psp5纯度的鉴定结果 | 第61-62页 |
| ·psp5的红外光谱分析结果 | 第62-63页 |
| 3 讨论 | 第63-65页 |
| 第四节 psp2多糖组分一级化学结构的研究 | 第65-75页 |
| 1 材料和方法 | 第65-69页 |
| ·材料 | 第65-66页 |
| ·方法 | 第66-69页 |
| 2 结果 | 第69-74页 |
| ·psp2分子量的测定结果 | 第69页 |
| ·psp2糖苷键键型分析结果 | 第69-70页 |
| ·psp2组成分析结果 | 第70-73页 |
| ·psp2糖苷键连接方式分析结果 | 第73-74页 |
| 3 讨论 | 第74-75页 |
| 第三章 钝顶螺旋藻多糖抗肿瘤作用的研究 | 第75-106页 |
| 第一节 psp2与psp5对HeLa细胞的影响 | 第75-98页 |
| 1 材料和方法 | 第75-80页 |
| ·材料 | 第75-76页 |
| ·方法 | 第76-80页 |
| 2 结果 | 第80-91页 |
| ·psp抑制HeLa细胞生长实验结果 | 第80-82页 |
| ·细胞周期测定和免疫组化染色结果 | 第82-86页 |
| ·psp诱导HeLa细胞凋亡的检测结果 | 第86-91页 |
| 3 讨论 | 第91-98页 |
| ·psp2和psp5对HeLa细胞增殖、凋亡和细胞周期的影响 | 第92-93页 |
| ·免疫组化染色和细胞周期分析 | 第93-97页 |
| ·psp诱导HeLa细胞凋亡分析 | 第97-98页 |
| 第二节 psp2与psp5对MCF和SVOA细胞的影响 | 第98-106页 |
| 1 材料和方法 | 第98-99页 |
| ·材料 | 第98-99页 |
| ·方法 | 第99页 |
| 2 结果 | 第99-105页 |
| ·psp抑制MCF和SVOA细胞生长实验结果 | 第99-101页 |
| ·流式细胞术检测psp对MCF和SVOA细胞周期、凋亡的影响结果 | 第101-105页 |
| 3 讨论 | 第105-106页 |
| 总结 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-114页 |
| 致谢 | 第114-115页 |
| 论文发表情况 | 第115页 |
