| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 图表目录 | 第11-13页 |
| 英文缩写一览表 | 第13-15页 |
| 第一部分 大鼠DRG神经元G蛋白耦联受体的胞吞时空特性 | 第15-78页 |
| 1. 引言 | 第15-18页 |
| 2. 材料和方法 | 第18-21页 |
| ·大鼠背根神经节(DRG)神经元的急性分离 | 第18页 |
| ·全细胞膜片钳记录 | 第18页 |
| ·P2Y1 DNA 和 Nudel 结构 | 第18-19页 |
| ·细胞转染 | 第19页 |
| ·细胞内钙离子测量方法 | 第19页 |
| ·单个囊泡和单个细胞荧光检测 | 第19-20页 |
| ·试剂 | 第20页 |
| ·数据分析和统计学处理 | 第20-21页 |
| 3. 实验结果 | 第21-61页 |
| ·应用膜电容测量 ADP 引起 DRG 神经元膜胞吞 | 第21-22页 |
| ·ADP 引起细胞膜电容变化的剂量依赖性和时间相关性 | 第22页 |
| ·ADP 引起胞吞的动力学效应 | 第22-25页 |
| ·FM荧光成像检测ADP引起的胞吞 | 第25-26页 |
| ·FM 荧光成像实时检测(FII)单个囊泡胞吞 | 第26-31页 |
| ·Ca~(2+)对 ADP 引起胞吞的影响 | 第31-32页 |
| ·ADP 引起的胞吞不需要细胞内钙明显的升高 | 第31-32页 |
| ·ADP 引起的胞吞不需要细胞外钙的参与 | 第32页 |
| ·Suramin 能够可逆的阻断ATP 引起的胞吞 | 第32-34页 |
| ·阻断蛋白质磷酸化能够阻断 ATP 引起的胞吞 | 第34页 |
| ·ADP 引起的胞吞是由clathrin 介导的 | 第34-39页 |
| ·dynamin 不参与 ADP 引起的胞吞 | 第39-42页 |
| ·dynamin.1不能阻抑ADP引起的胞吞 | 第39-41页 |
| ·dynamin.2也不能阻抑ADP引起的胞吞 | 第41-42页 |
| ·ADP引起的胞吞是P2Y1受体内吞 | 第42页 |
| ·5.HT在DRG神经元上也引起胞吞 | 第42-46页 |
| ·NGF在DRG神经元上也引起胞吞 | 第46页 |
| ·在 HEK293 细胞上观察配体刺激引起的胞吞 | 第46-49页 |
| ·ADP 和高K~+刺激引起的胞吞在胞内分布明显不同 | 第49-53页 |
| ·GPCR 和TRK 引起胞吞囊泡/FM 荧光亮点的不同特性 | 第53页 |
| ·神经元胞体中 Dynein 逆行运输蛋白是 ADP 引起的胞吞过程所必需的 | 第53-61页 |
| 4. 讨论 | 第61-67页 |
| 5. 结论 | 第67-68页 |
| 6. 参考文献 | 第68-78页 |
| 第二部分:胆碱能 M 型受体对 N 型受体的调控机制 | 第78-101页 |
| 1. 引言 | 第78-80页 |
| 2. 材料和方法 | 第80-82页 |
| ·大鼠颈上神经节(SCG)神经元的急性分离 | 第80页 |
| ·全细胞膜片钳记录 | 第80页 |
| ·细胞内钙离子测量方法 | 第80-81页 |
| ·电化学炭纤微电极记录 | 第81页 |
| ·试剂 | 第81页 |
| ·数据分析和统计学处理 | 第81-82页 |
| 3. 实验结果 | 第82-93页 |
| ·去甲肾上腺素、Bradykinin 和somatostatin 对尼古丁电流的影响 | 第82页 |
| ·MCh 对 SCG 神经元分泌和细胞内钙离子的影响 | 第82-83页 |
| ·PKC 途径 | 第83页 |
| ·抑制胞内 PLC 水平,对 M.抑制的影响 | 第83页 |
| ·PKC 水平对M.抑制的影响 | 第83页 |
| ·PKA水平对M.抑制的影响 | 第83-84页 |
| ·联合PKC 和PKA 对 M.抑制的影响 | 第84-85页 |
| ·M 型胆碱能受体对 N 型胆碱能受体引起分泌效应的抑制 | 第85-93页 |
| 4. 讨论 | 第93-95页 |
| 5. 结论 | 第95-96页 |
| 6. 参考文献 | 第96-101页 |
| 读博期间已发表和待发表的论文 | 第101-103页 |
| 文献综述:蛋白酶激活受体:调节G 蛋白耦联受体信号和转导通路 | 第103-121页 |
| 致谢 | 第121页 |
