| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-9页 |
| 前言 | 第9-10页 |
| 第一部分 PEG对甘薯(Ipomoea batatas Lam)愈伤组织淀粉酶的调节作用 | 第10-34页 |
| 1 材料与方法 | 第10-12页 |
| ·材料 | 第10-11页 |
| ·甘薯 | 第10页 |
| ·培养基 | 第10-11页 |
| ·主要仪器 | 第11页 |
| ·主要试剂 | 第11页 |
| ·试验内容和研究方法 | 第11-12页 |
| ·愈伤组织诱导及继代培养 | 第11页 |
| ·PEG处理愈伤组织 | 第11页 |
| ·淀粉酶提取 | 第11页 |
| ·淀粉酶活性检测 | 第11-12页 |
| ·淀粉酶活性强度检测 | 第12页 |
| 2 实验观察结果与分析 | 第12-29页 |
| ·甘薯愈伤组织的培养 | 第12-13页 |
| ·川薯101根、茎、叶柄、叶片的愈伤组织 | 第12-13页 |
| ·渝紫—263、新大紫和胜南的愈伤组织 | 第13页 |
| ·川薯101不同器官诱导的愈伤组织淀粉酶活性的表达 | 第13-14页 |
| ·PEG对甘薯愈伤组织淀粉酶的调节作用 | 第14-29页 |
| ·PEG对叶片愈伤组织淀粉酶的调节作用 | 第14-18页 |
| ·PEG对叶柄愈伤组织淀粉酶的调节作用 | 第18-21页 |
| ·PEG对茎愈伤组织淀粉酶的调节作用 | 第21-25页 |
| ·PEG对根愈伤组织淀粉酶的调节作用 | 第25-29页 |
| 3 讨论 | 第29-32页 |
| ·培养适宜提取β-淀粉酶的甘薯愈伤组织 | 第29-30页 |
| ·川薯101不同器官愈伤组织淀粉酶活性表达差异的探讨 | 第30-31页 |
| ·PEG胁迫对甘薯愈伤组织淀粉酶活性影响的探讨 | 第31-32页 |
| 参考文献 | 第32-34页 |
| 第二部分 文献综述：甘薯及其两种重要可溶性蛋白研究进展 | 第34-53页 |
| 1 甘薯在医学保健方面的作用 | 第34-36页 |
| ·药理作用 | 第34-35页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第34-35页 |
| ·预防血小板减少和止血作用 | 第35页 |
| ·甘薯制剂 | 第35-36页 |
| ·引种巴西甘薯 | 第35页 |
| ·京薯2号 | 第35页 |
| ·甘薯(品种不详) | 第35-36页 |
| 2 甘薯生物技术研究进展 | 第36-40页 |
| ·体胚发生 | 第36-37页 |
| ·原生质体培养 | 第37-39页 |
| ·基因工程 | 第39-40页 |
| 3 甘薯储藏蛋白质(sporamin)研究进展 | 第40-46页 |
| ·甘薯储藏蛋白的组成和结构 | 第41-42页 |
| ·Sporamin的性质和功能 | 第42-43页 |
| ·甘薯储藏蛋白质提取和纯化 | 第43-44页 |
| ·Sporamin基因的结构分析 | 第44页 |
| ·Sporamin基因的表达与调控 | 第44-46页 |
| 4 甘薯淀粉酶研究进展 | 第46-48页 |
| ·甘薯块根中的β-淀粉酶 | 第46-47页 |
| ·甘薯愈伤组织中的淀粉酶 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 在读期间发表文章 | 第53-54页 |
| 声明 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
