| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一章 人参种质资源的研究现状 | 第14-25页 |
| 1．1 生物学性状及经济学性状的鉴定研究 | 第14-16页 |
| 1．2 细胞分类学研究 | 第16-17页 |
| 1．3 组织解剖学的分类研究 | 第17-18页 |
| 1．4 同工酶、蛋白电泳分析研究 | 第18-19页 |
| 1．5 植物化学分类研究 | 第19-21页 |
| 1．6 DNA指纹技术的研究 | 第21-25页 |
| 第二章 人参与西洋参生育性状和经济性状的鉴定研究方法 | 第25-29页 |
| 1 材料与方法 | 第25页 |
| 1．1 材料 | 第25页 |
| 1．2 方法 | 第25页 |
| 2 结果与分析 | 第25-28页 |
| 2．1 主要农艺性状的比较 | 第25-26页 |
| 2．2 黄果西洋参物候期 | 第26页 |
| 2．3 主要经济性状研究 | 第26-28页 |
| 2．3．1 结实性状 | 第26-27页 |
| 2．3．2 产量性状 | 第27-28页 |
| 3 小结与讨论 | 第28-29页 |
| 第三章 组织显微结构特征的研究 | 第29-33页 |
| 1 材料和方法 | 第29-30页 |
| 1．1 材料 | 第29页 |
| 1．2 方法 | 第29-30页 |
| 1．2．1 根茎叶横切面显微特征比较 | 第29页 |
| 1．2．2 主根粉末中草酸钙簇晶数量测定 | 第29-30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-32页 |
| 2．1 根组织显微结构特征的比较 | 第30页 |
| 2．2 主根粉末中草酸钙簇晶数量的测定 | 第30-31页 |
| 2．3 茎组织显微结构特征的比较 | 第31-32页 |
| 2．4 叶片组织显微结构特征的比较 | 第32页 |
| 3 小节与讨论 | 第32-33页 |
| 第四章 扫描电镜的超微结构观察研究 | 第33-36页 |
| 1 材料和方法 | 第33页 |
| 1．1 材料 | 第33页 |
| 1．2 方法 | 第33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-35页 |
| 2．1 花粉扫描结果观察与分析 | 第33-34页 |
| 2．2 叶表面扫描结果观察与分析 | 第34-35页 |
| 3 小节与讨论 | 第35-36页 |
| 第五章 生理超薄切片的电镜超微结构研究 | 第36-40页 |
| 1 材料和方法 | 第36-37页 |
| 1．1 材料 | 第36页 |
| 1．2 方法 | 第36-37页 |
| 1．2．1 固定 | 第36页 |
| 1．2．2 脱水 | 第36页 |
| 1．2．3 包埋 | 第36页 |
| 1．2．4 定位 | 第36页 |
| 1．2．5 超薄切片及染色 | 第36页 |
| 1．2．6 拍照 | 第36-37页 |
| 1．2．7 观察 | 第37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-39页 |
| 2．1 淀粉粒特征比较 | 第37-38页 |
| 2．1．1 根组织中淀粉粒观察结果 | 第37页 |
| 2．1．2 叶组织中淀粉粒观察结果 | 第37-38页 |
| 2．2 茎及叶片中叶绿体特征比较 | 第38页 |
| 2．3 线粒体特征比较 | 第38-39页 |
| 3 小结与讨论 | 第39-40页 |
| 第六章 过氧化物酶及醇溶蛋白电泳技术的鉴定研究 | 第40-45页 |
| 1 过氧化物酶的鉴定研究方法 | 第40-42页 |
| 1．1 材料和方法 | 第40-41页 |
| 1．1．1 材料 | 第40页 |
| 1．1．2 实验仪器和试剂 | 第40页 |
| 1．1．3 方法 | 第40-41页 |
| 1．1．3．1 样品的制备 | 第40页 |
| 1．1．3．2 制胶 | 第40页 |
| 1．1．3．3 点样及电泳和染色 | 第40-41页 |
| 1．2 结果和分析 | 第41-42页 |
| 1．3 小结与讨论 | 第42页 |
| 2 种子醇溶蛋白电泳分析 | 第42-45页 |
| 2．1 材料和方法 | 第42-43页 |
| 2．1．1 材料 | 第42页 |
| 2．1．2 实验仪器和试剂 | 第42页 |
| 2．1．3 方法 | 第42-43页 |
| 2．1．3．1 样品提取 | 第42-43页 |
| 2．1．3．2 制胶 | 第43页 |
| 2．1．3．3 加样、电泳及染色 | 第43页 |
| 2．2 结果与分析 | 第43-44页 |
| 2．3 小结与讨论 | 第44-45页 |
| 第七章 基因组的特异RAPD差异性分析 | 第45-52页 |
| 1 材料与方法 | 第45-47页 |
| 1．1 实验材料 | 第45页 |
| 1．2 实验试剂 | 第45页 |
| 1．3 实验用仪器设备 | 第45页 |
| 1．4 方法 | 第45-47页 |
| 1．4．1 DNA提取 | 第45-46页 |
| 1．4．2 RAPD扩增 | 第46-47页 |
| 1．4．2．1 RAPD扩增体系 | 第46页 |
| 1．4．2．2 RAPD扩增程序 | 第46页 |
| 1．4．2．3 琼脂糖凝胶的制备 | 第46-47页 |
| 1．4．2．4 电泳 | 第47页 |
| 1．4．2．5 数据分析 | 第47页 |
| 1．4．2．6 聚类分析 | 第47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-51页 |
| 2．1 基因组DNA提取结果 | 第47-48页 |
| 2．2 RAPD扩增结果 | 第48-50页 |
| 2．3 四个品种间的共有带率及遗传距离指数的计算结果 | 第50页 |
| 2．4 聚类分析结果 | 第50-51页 |
| 3 小结与讨论 | 第51-52页 |
| 第八章 RAPD特异片段的克隆及分析 | 第52-69页 |
| 1 材料与方法 | 第52-56页 |
| 1．1 材料 | 第52页 |
| 1．2 实验试剂与仪器 | 第52页 |
| 1．3 方法 | 第52-56页 |
| 1．3．1 人参西洋参基因组DNA的提取 | 第52页 |
| 1．3．2 Bulked-DNA的制备 | 第52-53页 |
| 1．3．3 RAPD特异片段的扩增 | 第53页 |
| 1．3．4 特异片段的回收 | 第53页 |
| 1．3．5 特异片段的克隆 | 第53-54页 |
| 1．3．5．1 特异片段与pMD-18T载体的连接 | 第53页 |
| 1．3．5．2 感受态细胞的制备 | 第53-54页 |
| 1．3．5．3 质粒转化 | 第54页 |
| 1．3．6 重组子鉴定 | 第54-56页 |
| 1．3．6．1 蓝白斑筛选 | 第54页 |
| 1．3．6．2 重组质粒提取 | 第54-55页 |
| 1．3．6．3 电泳鉴定分子量大小 | 第55页 |
| 1．3．6．4 酶切鉴定 | 第55-56页 |
| 1．3．7 序列测定 | 第56页 |
| 1．3．8 序列分析 | 第56页 |
| 2 结果与分析 | 第56-66页 |
| 2．1 人参西洋参DNA的提取 | 第56页 |
| 2．2 特异片段的扩增 | 第56页 |
| 2．3 重组子筛选 | 第56-58页 |
| 2．3．1 蓝白斑筛选 | 第56-57页 |
| 2．3．2 电泳鉴定 | 第57-58页 |
| 2．3．3 酶切鉴定 | 第58页 |
| 2．4 特异片段的序列测定结果 | 第58-60页 |
| 2．4．1 人参特异片段（pRS）的序列测定结果 | 第58页 |
| 2．4．2 西洋参特异片段（pXYS）的序列测定结果 | 第58-59页 |
| 2．4．3 黄果参特异片段（pHUG）的序列测定结果 | 第59页 |
| 2．4．4 红果参特异片段（pHOG）的序列测定结果 | 第59-60页 |
| 2．5 应用WINDNASIS软件进行同源性比较和开放阅读框分析结果@49 | 第60-66页 |
| 3 小结与讨论 | 第66-69页 |
| 3．1 RAPD操作中的技术问题 | 第66-67页 |
| 3．1．1 基因组DNA的影响 | 第66-67页 |
| 3．1．2 弱带的处理 | 第67页 |
| 3．1．3 位点分析 | 第67页 |
| 3．2 鉴定结论 | 第67-69页 |
| 第九章 人参皂苷类成分的色谱指纹图谱鉴别 | 第69-77页 |
| 1 仪器与试剂 | 第69页 |
| 2 方法与结果 | 第69-70页 |
| 2．1 色谱条件 | 第69页 |
| 2．2 对照品溶液的制备 | 第69页 |
| 2．3 供试品的制备 | 第69页 |
| 2．4 稳定性试验 | 第69-70页 |
| 2．5 精密度试验 | 第70页 |
| 3 结果与分析 | 第70-75页 |
| 3．1 根中皂苷相对含量的比较 | 第70-71页 |
| 3．2 茎中皂苷相对含量的比较 | 第71-72页 |
| 3．3 叶中皂苷相对含量的比较 | 第72-73页 |
| 3．4 果中皂苷相对含量的比较 | 第73-75页 |
| 3．5 各部位中皂苷相对含量的总比较 | 第75页 |
| 4 小节与讨论 | 第75-77页 |
| 第十章 结论、问题与展望 | 第77-80页 |
| 参考文献 | 第80-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 作者简介 | 第86-96页 |
