| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 引言 | 第8-20页 |
| 第一部分 甲磺隆压电免疫传感器的研究 | 第20-44页 |
| 1 基本原理 | 第20-21页 |
| 1．1 Sauerbrey方程 | 第20页 |
| 1．2 基本电路 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-27页 |
| 2．1 实验材料 | 第21-23页 |
| 2．2 抗体的制备和ELISA方法筛选 | 第23页 |
| 2．2．1 抗体的制备与效价测定 | 第23页 |
| 2．2．2 甲磺隆抗体的ELISA方法筛选 | 第23页 |
| 2．2．3 甲磺隆ELISA分析方法的标准曲线及最低检测限 | 第23页 |
| 2．3 压电免疫传感器的研究 | 第23-27页 |
| 2．3．1 固定化方法的选择 | 第23-24页 |
| 2．3．2 测量方法 | 第24-25页 |
| 2．3．3 APTES-PROTEIN-A法分析条件的优化 | 第25-26页 |
| 2．3．4 系统噪声的研究 | 第26页 |
| 2．3．5 标准曲线的建立 | 第26页 |
| 2．3．6 结构类似物及溶液基质的影响 | 第26页 |
| 2．3．7 传感晶体的再生与使用寿命 | 第26-27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-38页 |
| 3．1 抗体的制备与ELISA方法筛选 | 第27-29页 |
| 3．1．1 抗血清的效价 | 第27页 |
| 3．1．2 包被原、抗体与甲磺隆的反应性 | 第27-28页 |
| 3．1．3 标准曲线和最低检测限 | 第28-29页 |
| 3．2 甲磺隆压电免疫传感器的研究 | 第29-38页 |
| 3．2．1 不同固定化方法的比较 | 第29-32页 |
| 3．2．2 生物活性材料的固定量 | 第32页 |
| 3．2．3 温育反应的时间 | 第32-33页 |
| 3．2．4 反应缓冲液的最佳pH值 | 第33-34页 |
| 3．2．5 传感晶体的干燥条件 | 第34页 |
| 3．2．6 系统的噪声 | 第34-35页 |
| 3．2．7 标准曲线和最低检测限 | 第35-36页 |
| 3．2．8 传感晶体的交叉反应 | 第36-38页 |
| 3．2．9 传感晶体的使用寿命 | 第38页 |
| 4 讨论 | 第38-44页 |
| 4．1 抗体的固定化 | 第38-40页 |
| 4．2 固定化抗体与抗原反应的热力学探讨 | 第40-41页 |
| 4．3 与ELISA分析方法的比较 | 第41-44页 |
| 第二部分 甲磺隆土壤结合残留的研究 | 第44-58页 |
| 1 材料与方法 | 第44-49页 |
| 1．1 实验材料 | 第44-45页 |
| 1．2 实验方法 | 第45-49页 |
| 1．2．1 土壤的标记与培养 | 第45-46页 |
| 1．2．2 方法的回收率 | 第46页 |
| 1．2．3 非结合态残留的提取和结合态残留的测定 | 第46-47页 |
| 1．2．4 含结合残留土壤的腐殖质组分的分离与测定方法 | 第47页 |
| 1．2．5 含~（14）C-甲磺隆结合残留土壤的作物培养 | 第47-49页 |
| 2 结果与分析 | 第49-55页 |
| 2．1 索氏提取方法的回收率、及NYH-1型~（14）C核素高灵敏探测装置的探测效率 | 第49-50页 |
| 2．2 土壤的结合残留动态 | 第50-51页 |
| 2．2．1 土壤本底 | 第50页 |
| 2．2．2 土壤结合残留动态 | 第50-51页 |
| 2．3 ~（14）C-甲磺隆的土壤结合残留物在土壤腐植质组分中的分布 | 第51-52页 |
| 2．4 ~（14）C-甲磺隆结合残留物对后茬敏感作物的有效性 | 第52-55页 |
| 2．4．1 土壤结合态~（14）C-甲磺隆残留物对玉米幼苗生长的影响 | 第52-54页 |
| 2．4．2 ~（14）C-甲磺隆土壤结合残留对玉米幼苗的致害剂量 | 第54-55页 |
| 3 讨论 | 第55-58页 |
| 3．1 土壤有机质对结合残留形成的影响 | 第55-56页 |
| 3．2 土壤微生物对结合残留形成的影响 | 第56-57页 |
| 3．3 甲磺隆结合残留的生物有效性 | 第57-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
