| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-21页 |
| ·油茶研究进展 | 第11-13页 |
| ·油茶形态及其生物学特性 | 第11-12页 |
| ·化学成分及其生物活性 | 第12页 |
| ·繁殖与栽培管理 | 第12-13页 |
| ·油茶生物技术领域研究进展 | 第13-15页 |
| ·油茶组织培养研究进展 | 第13-14页 |
| ·分子标记技术的运用 | 第14-15页 |
| ·cDNA文库构建以及基因克隆 | 第15页 |
| ·病毒诱导的基因沉默研究概况 | 第15-21页 |
| ·病毒诱导的基因沉默(VIGS)的发现 | 第15-16页 |
| ·病毒诱导的基因沉默(VIGS)的作用机理 | 第16-17页 |
| ·病毒诱导基因沉默的病毒载体 | 第17-18页 |
| ·VIGS技术的优越性和局限性 | 第18-19页 |
| ·VIGS技术在植物基因功能上的研究和应用 | 第19-21页 |
| 第2章 引言 | 第21-23页 |
| ·研究的目的与意义 | 第21-22页 |
| ·研究的技术路线 | 第22页 |
| ·研究内容 | 第22-23页 |
| 第3章 油茶离体培养体系的建立 | 第23-29页 |
| ·实验材料 | 第23页 |
| ·植物材料 | 第23页 |
| ·仪器设备与试剂 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-24页 |
| ·种子萌发试验 | 第23页 |
| ·茎段、叶片愈伤组织的诱导试验 | 第23-24页 |
| ·结果与分析 | 第24-26页 |
| ·油茶种子萌发试验 | 第24页 |
| ·基本培养基和激素组合对茎段愈伤组织诱导的影响 | 第24-25页 |
| ·基本培养基和激素组合对叶片愈伤组织诱导的影响 | 第25-26页 |
| ·结论与讨论 | 第26-29页 |
| 第4章 油茶组培快繁体系的建立 | 第29-37页 |
| ·实验材料 | 第29页 |
| ·植物材料 | 第29页 |
| ·主要仪器设备与试剂 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-30页 |
| ·初代培养 | 第29页 |
| ·继代增殖培养 | 第29-30页 |
| ·壮苗培养 | 第30页 |
| ·生根培养 | 第30页 |
| ·炼苗与移栽 | 第30页 |
| ·结果与分析 | 第30-35页 |
| ·不同激素浓度配比对油茶茎段诱导的影响 | 第30-31页 |
| ·不同激素组合对油茶茎段增殖的影响 | 第31-33页 |
| ·不同激素浓度对油茶瓶内生根的影响 | 第33-34页 |
| ·不同激素浓度处理对油茶组培苗瓶外生根的影响 | 第34页 |
| ·不同浸蘸时间对油茶组培苗瓶外生根的影响 | 第34-35页 |
| ·结论与讨论 | 第35-37页 |
| 第5章 油茶PDS基因的克隆及VIGS系统在油茶、油桐叶片中的应用 | 第37-59页 |
| ·实验材料 | 第37-39页 |
| ·植物材料与生长条件 | 第37页 |
| ·质粒与菌种 | 第37页 |
| ·实验仪器与试剂 | 第37-39页 |
| ·实验方法 | 第39-46页 |
| ·病毒载体的构建 | 第39-44页 |
| ·农杆菌介导的病毒感染 | 第44页 |
| ·侵染植株总RNA的提取 | 第44页 |
| ·PDS基因沉默的病毒分子检测 | 第44-45页 |
| ·PDS基因表达水平的分子检测 | 第45-46页 |
| ·结果与分析 | 第46-56页 |
| ·油茶、油桐总RNA的提取与质量检测 | 第46页 |
| ·油茶、油桐PDS基因序列的克隆及VIGS病毒载体的构建 | 第46-51页 |
| ·VIGS系统在油茶中的应用及表型观察 | 第51-52页 |
| ·VIGS系统在油桐中的应用及表型观察 | 第52-53页 |
| ·侵染植株、对照植株叶片总RNA的提取 | 第53-54页 |
| ·RT-PCR检测油桐、油茶PDS基因沉默的病毒分子 | 第54-55页 |
| ·半定量RT-PCR检测PDS基因的表达水平 | 第55-56页 |
| ·结论与讨论 | 第56-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 附录 | 第67-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 在学期间所发表论文 | 第71页 |
