| 致谢 | 第1-10页 |
| 缩略语表 | 第10-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-33页 |
| 第一部分 微管蛋白的研究进展 | 第15-25页 |
| 1.微管的结构及动力学研究 | 第15-16页 |
| 2.微管蛋白序列及结构分析 | 第16-17页 |
| 3.高等植物中微管蛋白研究进展 | 第17-18页 |
| 4.植物中的微管骨架 | 第18-24页 |
| ·植物微管的排列方式 | 第18-20页 |
| ·微管与细胞分裂 | 第20-22页 |
| ·微管与细胞扩张及细胞伸长的关系 | 第22-24页 |
| 5 微管结合蛋白 | 第24-25页 |
| 第二部分 植物侧根的发育 | 第25-31页 |
| 1.侧根的形成及内源影响因素 | 第25-29页 |
| ·侧根的起始—建成细胞形成并重新进入细胞循环 | 第26-27页 |
| ·侧根原基形成并突破主根组织 | 第27-28页 |
| ·侧根分生组织的激活和侧根的伸长 | 第28-29页 |
| 2.影响侧根发育的环境因素 | 第29-31页 |
| ·磷对植物根系统结构的影响 | 第30-31页 |
| 第三部分 本研究的目的和意义 | 第31-33页 |
| 第二章 分子鉴定转基因回复和超表达株系 | 第33-42页 |
| 1.突变体的回复株系和野生型超表达分析 | 第33-42页 |
| ·材料 | 第33页 |
| ·方法 | 第33-40页 |
| ·载体构建 | 第33-34页 |
| ·农杆菌介导的水稻(籼稻)转化 | 第34-36页 |
| ·转基因株系的分子鉴定 | 第36-39页 |
| ·转基因株系的表型分析 | 第39-40页 |
| ·结果与分析 | 第40-42页 |
| ·突变体回复株系的表型分析和分子鉴定 | 第40页 |
| ·Kasalath野生型超表达转基因株系的表型分析和分子鉴定 | 第40-42页 |
| 第三章 OsTUA2的组织表达与OsTUA2共定位分析 | 第42-50页 |
| 1.OsTUA2启动子融合GUS转基因材料的表达分析 | 第42-45页 |
| ·材料 | 第42页 |
| ·方法 | 第42-43页 |
| ·pOsTUA2:GUS载体的构建 | 第42页 |
| ·水稻愈伤转基因 | 第42-43页 |
| ·GUS染色分析 | 第43页 |
| ·结果与分析 | 第43-45页 |
| 2.OsTUA2蛋白与MAP4的共定位 | 第45-49页 |
| ·材料 | 第46页 |
| ·方法 | 第46-48页 |
| ·N末端融合sGFP的载体的构建 | 第46页 |
| ·载体与MAP4-RFP瞬时表达洋葱表皮 | 第46-48页 |
| ·结果与分析 | 第48-49页 |
| 3.本章小结 | 第49-50页 |
| 第四章 Ostua2影响水稻根构型 | 第50-58页 |
| 1.Ostua2突变体的根系参数测定 | 第50-53页 |
| ·材料 | 第50页 |
| ·方法 | 第50-51页 |
| ·生长条件 | 第50-51页 |
| ·植株根系参数测定 | 第51页 |
| ·结果与分析 | 第51-53页 |
| 2.突变体侧根原基的解剖观察 | 第53-55页 |
| ·材料 | 第53页 |
| ·方法 | 第53页 |
| ·结果与分析 | 第53-55页 |
| 3.突变体根部细胞的组织切片观察 | 第55-57页 |
| ·材料 | 第55页 |
| ·方法 | 第55页 |
| ·结果与分析 | 第55-57页 |
| ·主根根尖的纵切片观察 | 第55-56页 |
| ·侧根原基和侧根的切片观察 | 第56-57页 |
| 4.本章小结 | 第57-58页 |
| 第五章 Ostua2的细胞生物学研究 | 第58-67页 |
| 1.有丝分裂期微管骨架及周质微管的观察 | 第58-61页 |
| ·材料 | 第58页 |
| ·方法 | 第58-59页 |
| ·结果与分析 | 第59-61页 |
| ·不同分裂时期微管骨架观察 | 第59-60页 |
| ·主根不同区域的微管骨架观察 | 第60-61页 |
| 2.侧根原基细胞壁及细胞核形态观察 | 第61-64页 |
| ·材料 | 第61-62页 |
| ·方法 | 第62-63页 |
| ·细胞壁染色分析 | 第62页 |
| ·侧根原基细胞核的观察 | 第62-63页 |
| ·结果与分析 | 第63-64页 |
| 3.木质素分析 | 第64-66页 |
| ·材料 | 第64页 |
| ·方法 | 第64页 |
| ·结果与分析 | 第64-66页 |
| 4.本章小结 | 第66-67页 |
| 第六章 生长素对Ostua2的影响 | 第67-73页 |
| 1.生长素报告基因DR5:GUS转基因株系分析 | 第67-68页 |
| ·材料 | 第67页 |
| ·方法 | 第67页 |
| ·结果与分析 | 第67-68页 |
| 2.突变体IAA含量的测定 | 第68-70页 |
| ·材料 | 第68-69页 |
| ·方法 | 第69-70页 |
| ·结果与分析 | 第70页 |
| 3.生长素对突变体表型的影响 | 第70-72页 |
| ·材料 | 第70-71页 |
| ·方法 | 第71页 |
| ·结果与分析 | 第71-72页 |
| 4.本章小结 | 第72-73页 |
| 第七章 OsTUA2参与磷信号调控系统 | 第73-81页 |
| 1.磷营养胁迫对Ostua2突变体和OsTUA2超表达株系的影响 | 第73-74页 |
| ·材料 | 第73页 |
| ·方法 | 第73页 |
| ·结果与分析 | 第73-74页 |
| 2.Ostua2突变体细胞分裂素含量的测定 | 第74-78页 |
| ·材料 | 第74-75页 |
| ·方法 | 第75-77页 |
| ·材料的低磷处理 | 第75页 |
| ·酶联免疫吸附测定法测定细胞分裂素有效成分的含量 | 第75-77页 |
| ·结果和分析 | 第77-78页 |
| 3.磷饥饿诱导基因在突变体中的表达分析 | 第78-80页 |
| ·材料 | 第78页 |
| ·方法 | 第78-79页 |
| ·结果与分析 | 第79-80页 |
| 4.本章小结 | 第80-81页 |
| 第八章 结论与展望 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-93页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第93页 |
