| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-26页 |
| ·八角和八角的加工概况 | 第16页 |
| ·反式茴脑、茴香醛和茴香酸的理化性质和用途 | 第16-18页 |
| ·反式茴脑、茴香醛和茴香酸的主要理化性质 | 第17页 |
| ·反式茴脑、茴香醛和茴香酸的主要用途 | 第17-18页 |
| ·反式茴脑合成茴香醛和茴香酸的研究进展 | 第18-20页 |
| ·茴香醛的合成 | 第18-20页 |
| ·茴香酸的合成 | 第20页 |
| ·反式茴脑微生物降解与转化研究进展 | 第20-22页 |
| ·过氧化物酶及其在氧化丙烯基苯化合物中的应用 | 第22-23页 |
| ·本课题的研究意义 | 第23-24页 |
| ·本课题的研究思路 | 第24-26页 |
| 第二章 反式茴脑生物降解和转化过程分析方法的建立 | 第26-39页 |
| ·材料与方法 | 第26-29页 |
| ·材料 | 第26-27页 |
| ·分析方法 | 第27-28页 |
| ·生物转化液的处理 | 第28-29页 |
| ·结果与讨论 | 第29-38页 |
| ·薄层色谱法 | 第29-30页 |
| ·茴香醛的硫代巴比妥酸分光光度法测定 | 第30-31页 |
| ·薄层层析—紫外分光光度法 | 第31-33页 |
| ·高效液相色谱法(HPLC法) | 第33-38页 |
| ·本章小结 | 第38-39页 |
| 第三章 生物降解和转化反式茴脑的微生物筛选及菌株鉴定 | 第39-55页 |
| ·材料与方法 | 第39-44页 |
| ·标本采集 | 第39-40页 |
| ·培养基 | 第40-41页 |
| ·主要仪器与药品 | 第41页 |
| ·土样中分离筛选茴油生物降解菌株的方法 | 第41-42页 |
| ·八角植物内生菌的分离、纯化与筛选 | 第42-43页 |
| ·八角加工车间废液中真菌菌株的分离与筛选 | 第43页 |
| ·分析方法 | 第43-44页 |
| ·目的菌株的鉴定 | 第44页 |
| ·结果与讨论 | 第44-53页 |
| ·土样中降解反式茴脑细菌菌株的筛选与鉴定 | 第44-49页 |
| ·八角内生菌的分离和降解反式茴脑菌株的筛选与鉴定 | 第49-53页 |
| ·八角加工车间废液中降解反式茴脑真菌菌株筛选与鉴定 | 第53页 |
| ·本章小结 | 第53-55页 |
| 第四章 两相系统中生物转化反式茴脑合成茴香醛的研究 | 第55-68页 |
| ·材料与方法 | 第55-58页 |
| ·菌种 | 第55页 |
| ·培养基 | 第55-56页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第56页 |
| ·菌体的培养和反式茴脑的生物转化 | 第56页 |
| ·菌体生物量测定 | 第56页 |
| ·转化液的分析 | 第56页 |
| ·两相系统中游离细胞转化反式茴脑生成茴香醛的研究 | 第56-57页 |
| ·两相系统中固定化细胞转化反式茴脑生成茴香醛的初步研究 | 第57页 |
| ·转化液中茴香醛的提取分离研究 | 第57-58页 |
| ·结果与讨论 | 第58-66页 |
| ·假单胞菌BT-13菌体生物量和OD600标准曲线 | 第58-59页 |
| ·两相系统中游离细胞转化反式茴脑生成茴香醛的研究 | 第59-65页 |
| ·两相系统中固定化细胞转化反式茴脑生成茴香醛的初步研究 | 第65页 |
| ·茴香醛萃取分离初步研究 | 第65-66页 |
| ·本章小结 | 第66-68页 |
| 第五章 假单胞菌BT-13生物转化反式茴脑合成茴香酸 | 第68-83页 |
| ·材料与方法 | 第68-70页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第68页 |
| ·菌种和培养基 | 第68-69页 |
| ·菌体培养和反式茴脑微生物转化 | 第69页 |
| ·分析方法 | 第69页 |
| ·上罐发酵试验 | 第69-70页 |
| ·结果与讨论 | 第70-82页 |
| ·假单胞菌BT-13催化反式茴脑合成茴香酸 | 第70-71页 |
| ·摇瓶转化条件的研究 | 第71-80页 |
| ·上罐发酵试验 | 第80-82页 |
| ·本章小结 | 第82-83页 |
| 第六章 黑曲霉生物降解反式茴脑途径 | 第83-98页 |
| ·材料与方法 | 第83-87页 |
| ·菌种 | 第83页 |
| ·培养基 | 第83页 |
| ·主要仪器 | 第83-84页 |
| ·主要药品 | 第84页 |
| ·真菌菌丝体培养 | 第84页 |
| ·摇瓶培养条件下黑曲霉ZJ-9降解反式茴脑及发酵液的处理 | 第84页 |
| ·上罐发酵条件下黑曲霉ZJ-9降解反式茴脑及发酵液的处理 | 第84-85页 |
| ·黑曲霉ZJ-9粗酶液中过氧化物酶和过氧化氢酶的检测 | 第85-86页 |
| ·生物降解中间产物分析 | 第86-87页 |
| ·结果与讨论 | 第87-97页 |
| ·上罐条件下生物降解反式茴脑发酵液中主要中间产物的分析和鉴定 | 第87-94页 |
| ·上罐条件下与摇瓶培养条件下降解反式茴脑产物积累对比 | 第94-95页 |
| ·粗酶液POD和CAT的酶活检测 | 第95页 |
| ·黑曲霉ZJ-9生物降解反式茴脑途径 | 第95-97页 |
| ·本章小结 | 第97-98页 |
| 第七章 假单胞菌BT-13生物降解反式茴脑途径 | 第98-107页 |
| ·材料和方法 | 第98-99页 |
| ·菌种 | 第98页 |
| ·培养基 | 第98页 |
| ·主要仪器和药品 | 第98页 |
| ·细菌菌体培养方法 | 第98页 |
| ·假单胞菌BT-13转化反式茴脑及转化液的处理 | 第98-99页 |
| ·粗酶液转化反式茴脑方法 | 第99页 |
| ·生物降解中间产物分析 | 第99页 |
| ·结果与讨论 | 第99-106页 |
| ·假单胞菌BT-13生物降解反式茴脑中间产物的鉴定 | 第99-101页 |
| ·假单胞菌BT-13粗酶液POD和CAT的酶活检测 | 第101-102页 |
| ·假单胞菌BT-13粗酶液转化反式茴脑产物分析 | 第102-103页 |
| ·假单胞菌BT-13粗酶液转化反式茴脑部分条件研究 | 第103-104页 |
| ·假单胞菌BT-13生物降解反式茴脑途径推测 | 第104-106页 |
| ·本章小结 | 第106-107页 |
| 第八章 结论与展望 | 第107-110页 |
| ·结论 | 第107-109页 |
| ·展望 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-118页 |
| 附录 | 第118-121页 |
| 附录1: 图6-4主要出峰物质的质谱图 | 第118-119页 |
| 附录2: 图6-4中10号出峰物质的HNMR和IR谱图 | 第119-120页 |
| 附录3: 图7-1 15号出峰物质的质谱图 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121-122页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第122页 |
