| 中文摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 缩略词(Abbreviations) | 第12-13页 |
| 绪论 | 第13-14页 |
| 第一部分 文献综述 | 第14-28页 |
| 第一章 RGMb及其信号通路 | 第14-24页 |
| 1 RGM家族成员介绍 | 第14页 |
| 2 RGMb的功能与结构 | 第14-16页 |
| 2.1 RGMb的结构 | 第14-15页 |
| 2.2 RGMb的定位与功能 | 第15-16页 |
| 3 RGMb及其信号通路 | 第16-20页 |
| 3.1 BMP系统 | 第16-17页 |
| 3.2 Smad系统 | 第17-18页 |
| 3.3 MAPK系统 | 第18-19页 |
| 3.4 Neogenin蛋白 | 第19-20页 |
| 4 RGMb与其信号通路的生物学作用 | 第20-24页 |
| 4.1 RGMb/BMP系统 | 第20-21页 |
| 4.2 RGMb/Smad系统 | 第21页 |
| 4.3 RGMb/MAPK系统 | 第21页 |
| 4.4 RGMb与Neogenin蛋白 | 第21-24页 |
| 第二章 BMP/Smad与MAPK信号通路在子宫中的作用 | 第24-28页 |
| 1 BMP信号通路在子宫中的生物学作用 | 第24页 |
| 2 Smad信号在子宫中的生物学作用 | 第24-25页 |
| 3 MAPK系统在子宫中的生物学作用 | 第25-28页 |
| 第二部分 试验研究 | 第28-60页 |
| 第三章 RGMb基因在湖羊机体的表达及RGMb蛋白在子宫中的定位研究 | 第28-44页 |
| 1 材料与方法 | 第29-35页 |
| 1.1 试验材料 | 第29-30页 |
| 1.2 试验方法 | 第30-35页 |
| 1.3 数据统计与分析 | 第35页 |
| 2 结果 | 第35-41页 |
| 2.1 PCR扩增结果 | 第35-36页 |
| 2.2 RGMb CDS区测序分析 | 第36-37页 |
| 2.3 RGMb mRNA在湖羊机体不同组织中的表达 | 第37-39页 |
| 2.4 RGMb蛋白在湖羊子宫组织中的定位 | 第39-41页 |
| 3 讨论 | 第41-42页 |
| 3.1 RGMb基因CDS区分析 | 第41页 |
| 3.2 RGMb在机体组织中的表达 | 第41-42页 |
| 3.3 RGMb在子宫组织中的表达与定位 | 第42页 |
| 4 结论 | 第42-44页 |
| 第四章 限饲对湖羊子宫RGMb基因及BMP系统成员表达的影响 | 第44-54页 |
| 1 材料与方法 | 第45-46页 |
| 1.1 试验材料 | 第45页 |
| 1.2 试验方法 | 第45-46页 |
| 1.3 数据统计与分析 | 第46页 |
| 2 结果 | 第46-52页 |
| 2.1 目的基因BMP2/4及其受体的扩增曲线和溶解曲线 | 第46-50页 |
| 2.2 限饲对湖羊子宫RGMb蛋白和mRNA水平表达的影响 | 第50页 |
| 2.3 限饲对湖羊子宫BMP2和BMP4 mRNA表达的影响 | 第50-51页 |
| 2.4 限饲对湖羊子宫BMP受体mRNA表达的影响 | 第51-52页 |
| 3 讨论 | 第52-53页 |
| 3.1 限饲对RGMb与其信号通路成员影响 | 第52-53页 |
| 4 结论 | 第53-54页 |
| 第五章 下调RGMb对子宫内膜腺细胞Ishikawa的作用初探 | 第54-60页 |
| 1 材料与方法 | 第55-56页 |
| 1.1 试验材料 | 第55页 |
| 1.2 试验方法 | 第55-56页 |
| 1.3 数据统计与分析 | 第56页 |
| 2 结果 | 第56-59页 |
| 2.1 Ishikawa细胞转染siRGMb效果鉴定 | 第56-57页 |
| 2.2 下调RGMb对Ishikawa细胞增殖活力影响 | 第57-58页 |
| 2.3 下调RGMb影响Ishikawa细胞p-ERK1/2蛋白表达量 | 第58-59页 |
| 3 讨论 | 第59页 |
| 3.1 RGMb在子宫中的定位与功能 | 第59页 |
| 3.2 RGMb在子宫中的潜在作用机制 | 第59页 |
| 4 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 全文结论 | 第66-68页 |
| 创新点 | 第68-70页 |
| 附录: 相关溶液配制 | 第70-74页 |
| 攻读硕士期间发表及待发表的论文 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
