摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
上篇 文献综述 | 第10-18页 |
第一章 关于植物悬浮细胞的研究和应用 | 第10-13页 |
1 植物悬浮细胞的概念和培养 | 第10页 |
2 植物悬浮细胞的应用 | 第10-11页 |
3 高大林木类悬浮细胞的培养 | 第11-12页 |
4 影响悬浮细胞系建立的条件 | 第12-13页 |
4.1 愈伤组织的状态 | 第12页 |
4.2 合适的培养基 | 第12-13页 |
4.3 合适的悬浮培养条件 | 第13页 |
第二章 植物抗病诱导剂的诱导机理 | 第13-16页 |
1 植物诱导抗病性的特点 | 第13-14页 |
2 植物抗病诱导剂的诱导机制 | 第14-16页 |
2.1 信号转导 | 第14页 |
2.2 蛋白质的磷酸化和去磷酸化 | 第14页 |
2.3 钙离子信号信号 | 第14页 |
2.4 胞外基质的碱性作用 | 第14-15页 |
2.5 过氧化氢含量的爆发 | 第15页 |
2.6 防御酶系与诱导抗病性的关系 | 第15页 |
2.7 关于核黄素的研究 | 第15-16页 |
研究目的与意义 | 第16-17页 |
技术路线 | 第17-18页 |
下篇 研究内容 | 第18-45页 |
第一章 橡胶树7-33-97悬浮细胞体系的建立 | 第18-31页 |
1 材料与方法 | 第18-21页 |
1.1 实验材料 | 第18页 |
1.2 培养基 | 第18-19页 |
1.3 胚性悬浮细胞的培养 | 第19-20页 |
1.4 悬浮培养过程中的细胞学观察 | 第20页 |
1.5 悬浮细胞系生长性质的测定 | 第20页 |
1.6 悬浮细胞培养液中各激素和蔗糖浓度的筛选 | 第20-21页 |
2 结果与分析 | 第21-29页 |
2.1 悬浮细胞系建立过程中的显微观察 | 第21-23页 |
2.1.1 胚性愈伤组织的诱导 | 第21页 |
2.1.2 悬浮细胞系的建立 | 第21-23页 |
2.2 悬浮细胞系的生长特征 | 第23-24页 |
2.3 不同的激素浓度对细胞悬浮系生长的影响 | 第24-27页 |
2.3.1 不同浓度的2,4-D对橡胶树7-33-97悬浮细胞生长的影响 | 第24-25页 |
2.3.2 不同浓度的KT对橡胶树7-33-97悬浮细胞生长的影响 | 第25-26页 |
2.3.3 不同浓度的NAA对橡胶树7-33-97悬浮细胞生长的影响 | 第26-27页 |
2.4 不同蔗糖浓度对橡胶树7--33-97悬浮细胞生长的影响 | 第27-28页 |
2.5 悬浮培养液激素和蔗糖最佳浓度而的确定 | 第28-29页 |
3 讨论 | 第29-31页 |
3.1 愈伤组织的选择 | 第29-30页 |
3.2 橡胶树7-33-97悬浮细胞体系的建立 | 第30-31页 |
第二章 核黄素对橡胶树7-33-97悬浮细胞防卫反应的研究 | 第31-45页 |
1 材料与方法 | 第31-35页 |
1.1 实验材料 | 第31页 |
1.2 橡胶树7-33-97悬浮细胞培养 | 第31页 |
1.3 橡胶树7-33-97悬浮细胞活性显微观察和死亡率检测 | 第31页 |
1.4 核黄素使用浓度的确定 | 第31-32页 |
1.5 H_2O_2浓度的测定 | 第32页 |
1.6 核黄素诱导橡胶树7-33-97悬浮细胞相关酶活性的检测 | 第32-33页 |
1.7 核黄素诱导橡胶树7-33-97悬浮细胞防卫基因的表达 | 第33-35页 |
1.7.1 橡胶树7-33-97悬浮细胞总RNA的提取 | 第33-34页 |
1.7.2 橡胶树7-33-97悬浮细胞RNA的反转录 | 第34页 |
1.7.3 相关防卫基因的表达检测 | 第34-35页 |
2 结果与分析 | 第35-43页 |
2.1 核黄素最适使用浓度和橡胶树7-33-97悬浮细胞的显微观察 | 第35-37页 |
2.2 核黄素诱导橡胶树7-33-97悬浮细胞氧爆发的变化 | 第37-39页 |
2.3 核黄素诱导橡胶树7-33-97悬浮细胞胞外pH的变化 | 第39-40页 |
2.4 核黄素诱导橡胶树7-33-97悬浮细胞PAL活性的变化 | 第40-41页 |
2.5 核黄素诱导橡胶树7-33-97悬浮细胞POD的活性变化 | 第41-42页 |
2.6 核黄素诱导橡胶树7-33-97悬浮细胞HbPR1和HbNPR1抗性相关基因的表达 | 第42-43页 |
3 讨论 | 第43-45页 |
总结 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-50页 |
基金项目 | 第50页 |
已发表的论文 | 第50-51页 |
附录 | 第51-53页 |
致谢 | 第53页 |