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拟南芥IQM1介导茉莉酸信号转导的机制研究

摘要第5-7页
abstract第7-8页
第一章 前言第12-18页
    1.1 JA信号通路的研究第12-15页
        1.1.1 JAs的合成第12页
        1.1.2 JA信号的转导第12-13页
        1.1.3 JAZ蛋白家族第13-14页
        1.1.4 JA信号对气孔运动的调节第14-15页
    1.2 Ca~(2+)/CaM信号系统第15页
    1.3 Ca~(2+)/CaM与JA信号的研究第15页
    1.4 钙调素结合蛋白家族第15-16页
    1.5 IQM蛋白家族第16页
    1.6 IQM1与JA信号第16-17页
    1.7 研究目的与意义第17-18页
第二章 材料与方法第18-31页
    2.1 实验材料第18-20页
        2.1.1 植物材料第18页
        2.1.2 菌种和质粒第18页
        2.1.3 试剂盒、工具酶和化学试剂第18页
        2.1.4 溶液第18-19页
        2.1.5 培养基第19-20页
    2.2 实验方法第20-31页
        2.2.1 拟南芥的培养第20页
        2.2.2 拟南芥DNA的提取第20页
        2.2.3 拟南芥RNA的提取第20页
        2.2.4 RT-qPCR基因表达分析第20-21页
        2.2.5 质粒提取第21-22页
        2.2.6 酶切第22页
        2.2.7 DNA片段纯化第22-23页
        2.2.8 DNA片段回收第23页
        2.2.9 定向克隆第23页
        2.2.10 T-A克隆第23页
        2.2.11 载体构建第23-24页
        2.2.12 大肠杆菌感受态细胞的制备及转化第24-25页
        2.2.13 转化子筛选第25页
        2.2.14 农杆菌感受态细胞的制备和转化第25-26页
        2.2.15 农杆菌介导的遗传转化(浸染法)第26页
        2.2.16 PstDC3000菌液的制备第26页
        2.2.17 喷雾法接种PstDC3000第26-27页
        2.2.18 植物发病情况统计第27页
        2.2.19 GUS染色第27页
        2.2.20 T-DNA插入突变体的鉴定第27-28页
        2.2.21 双突变体构建第28页
        2.2.22 RNA免疫共沉淀第28-31页
第三章 结果与分析第31-48页
    3.1 IQM1所涉及的信号通路各组分的研究第31-34页
        3.1.1 各种基因型植株感染PstDC3000的叶片发病进程第32页
        3.1.2 各种基因型植株感染PstDC3000的叶片发病率第32-33页
        3.1.3 各种基因型植株感染PstDC3000的叶片病斑面积率第33-34页
    3.2 IQM1突变对JAZs基因表达的影响第34-35页
    3.3 IQM1介导茉莉酸信号转导的机制探究第35-48页
        3.3.1 双突变体iqm1-1JAZ1-GUSOE的筛选与鉴定第35-37页
        3.3.2 双突变体iqm1-1JAZ1-GUSOE的表达分析第37-39页
        3.3.3 双突变体iqm1-1JAZ1-GUSOE的表型分析第39-41页
        3.3.4 PJAZ1:JAZ1-GUS转基因株系的构建第41-43页
        3.3.5 双突变体iqm1-1P35S:GUS的构建第43-44页
        3.3.6 PJAZ6:JAZ6-GUS转基因株系的构建第44-46页
        3.3.7 IQM1的RNA结合活性的探究第46-48页
第四章 讨论第48-53页
    4.1 IQM1参与植物抗病依赖于MYC2或COI1的存在第48页
    4.2 IQM1基因功能缺失引起JAZ1表达下调第48-49页
    4.3 IQM1对JAZ1的调控不是通过蛋白质降解途径实现的第49页
    4.4 IQM1参与植物抗病可能不是通过直接调控JAZ1实现的第49-50页
    4.5 IQM1的RNA结合活性的探究第50-53页
参考文献第53-60页
附录第60-61页
    附录A 攻读硕士期间发表的论文第60页
    附录B 攻读硕士期间参加的学术会议第60-61页
致谢第61页

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