摘要 | 第5-7页 |
abstract | 第7-9页 |
第一章 脊椎动物内分泌生长轴基因的研究进展 | 第12-20页 |
1.生长激素及其受体的研究进展 | 第12-14页 |
1.1 生长激素 | 第12-13页 |
1.2 生长激素受体 | 第13-14页 |
2.胰岛素样生长因子系统的研究进展 | 第14-16页 |
2.1 胰岛素样生长因子 | 第14-15页 |
2.2 胰岛素样生长因子受体 | 第15页 |
2.3 胰岛素样生长因子结合蛋白 | 第15-16页 |
3.本研究的意义 | 第16-17页 |
参考文献 | 第17-20页 |
第二章 扬子鳄生长激素受体GHR的分子结构特征及其在冬眠期和活动期的时空表达变化 | 第20-37页 |
1.引言 | 第20-21页 |
2.材料与方法 | 第21-24页 |
2.1 实验材料 | 第21页 |
2.2 扬子鳄GHR基因cDNA序列全长的克隆 | 第21-23页 |
2.3 扬子鳄GHR分子序列的生物信息学分析 | 第23页 |
2.4 扬子鳄GHR的进化树和相似性分析 | 第23页 |
2.5 扬子鳄GHR的组织特异性表达 | 第23页 |
2.6 扬子鳄GHR基因在冬眠期和活动期表达量的变化 | 第23-24页 |
3.实验结果 | 第24-32页 |
3.1 扬子鳄GHRcDNA全长克隆 | 第24页 |
3.2 扬子鳄GHRcDNA的分子特征 | 第24-27页 |
3.3 扬子鳄GHR的进化树分析和相似性比较 | 第27-31页 |
3.4 扬子鳄GHR的组织特异性表达 | 第31页 |
3.5 扬子鳄GHRmRNA在活动期和冬眠期的表达变化 | 第31-32页 |
4.讨论 | 第32-35页 |
参考文献 | 第35-37页 |
第三章 扬子鳄胰岛素样生长因子1受体IGF-1R的分子结构特征及其在冬眠期和活动期的时空表达变化 | 第37-55页 |
1.引言 | 第37-38页 |
2.材料与方法 | 第38-40页 |
2.1 实验材料 | 第38页 |
2.2 扬子鳄IGF-1R基因cDNA序列全长的克隆 | 第38-39页 |
2.3 扬子鳄IGF-1R分子序列的生物信息学分析 | 第39页 |
2.4 扬子鳄IGF-1R的进化树和相似性分析 | 第39-40页 |
2.5 扬子鳄IGF-1R的组织特异性表达 | 第40页 |
2.6 扬子鳄IGF-1R基因在冬眠期和活动期表达量的变化 | 第40页 |
3.实验结果 | 第40-49页 |
3.1 扬子鳄IGF-1RcDNA序列全长的克隆 | 第40-41页 |
3.2 扬子鳄IGF-1RcDNA的分子结构特征 | 第41-43页 |
3.3 扬子鳄IGF-1R的进化树和相似性分析 | 第43-48页 |
3.4 扬子鳄IGF-1R的组织差异性表达 | 第48页 |
3.5 扬子鳄IGF-1RmRNA在活动期和冬眠期的表达变化 | 第48-49页 |
4.讨论 | 第49-53页 |
参考文献 | 第53-55页 |
第四章 扬子鳄IGF-2及其受体IGF-2R的分子结构特征及其在冬眠期和活动期的时空表达变化 | 第55-74页 |
1.引言 | 第55-57页 |
2.材料与方法 | 第57-59页 |
2.1 实验材料 | 第57页 |
2.2 总RNA的提取 | 第57页 |
2.3 扬子鳄IGF-2及其受体基因cDNA的第一条链的合成 | 第57页 |
2.4 扬子鳄IGF-2及其受体PCR引物设计 | 第57-58页 |
2.5 扬子鳄IGF-2及其受体基因cDNA片段的克隆 | 第58页 |
2.6 扬子鳄IGF-2及其受体基因序列的生物信息学分析 | 第58页 |
2.7 扬子鳄IGF-2及其受体在脊椎动物中系统发育树的构建 | 第58页 |
2.8 扬子鳄IGF-2及其受体的组织特异性表达 | 第58-59页 |
2.9 扬子鳄IGF-2及其受体基因在冬眠期和活动期的表达变化 | 第59页 |
3.实验结果 | 第59-68页 |
3.1 扬子鳄IGF-2及其受体部分序列扩增 | 第59-60页 |
3.2 扬子鳄IGF-2及其受体序列的分子特征 | 第60-61页 |
3.3 扬子鳄IGF-2及其受体进化树分析和相似性比较 | 第61-66页 |
3.4 扬子鳄IGF-2及其受体的组织特异性表达 | 第66-67页 |
3.5 扬子鳄IGF-2及其受体mRNA在活动期和冬眠期的表达变化 | 第67-68页 |
4.讨论 | 第68-71页 |
参考文献 | 第71-74页 |
致谢 | 第74页 |