中文摘要 | 第2-3页 |
Abstract | 第3页 |
引言 | 第6-8页 |
第一章 实验材料 | 第8-10页 |
1.1 主要试剂 | 第8-9页 |
1.2 细胞株 | 第9页 |
1.3 主要仪器设备 | 第9-10页 |
第二章 实验方法 | 第10-17页 |
2.1 细胞培养及实验设计 | 第10-11页 |
2.1.1 人HaCaT角质形成细胞的正常培养、冻存和复苏 | 第10页 |
2.1.2 实验分组及UVB辐射 | 第10-11页 |
2.2 实验项目及检测指标 | 第11-16页 |
2.2.1 Hoechst 33258 荧光染色法检测细胞凋亡 | 第11页 |
2.2.2 RT-PCR(Reverse Transcription PCR)反应 | 第11-14页 |
2.2.3 免疫印迹Western blot | 第14-15页 |
2.2.4 siRNA脂质体转染 | 第15-16页 |
2.3 统计学处理 | 第16-17页 |
第三章 实验结果 | 第17-29页 |
3.1 UVB辐射HaCaT细胞后凋亡率的检测 | 第17-18页 |
3.2 UVB辐射HaCaT细胞后Cat B、Bid、Bax m RNA表达经时变化 | 第18-19页 |
3.3 PCF对UVB辐射HaCaT细胞后Cat B、Bid、Bax mRNA表达的影响 | 第19-21页 |
3.4 PCF对UVB辐射HaCaT细胞后Cat B、Bid、Bax蛋白表达影响 | 第21-22页 |
3.5 PCF对UVB辐射HaCaT细胞后胞浆和线粒体内细胞色素C表达的影响 | 第22-23页 |
3.6 脂质体瞬时转染HaCaT细胞及转染效率的检测 | 第23-25页 |
3.7 Bid-siRNA、Bax-siRNA瞬时转染和抑制剂CA-074Me对UVB辐射HaCa T细胞后Cat B、Bid、Bax表达的影响 | 第25-26页 |
3.8 Bid-siRNA、Bax-siRNA瞬时转染和抑制剂CA-074Me对UVB辐射HaCa T细胞后胞浆和线粒体内Cyt c表达的影响 | 第26-29页 |
第四章 讨论 | 第29-36页 |
结论 | 第36-37页 |
参考文献 | 第37-44页 |
综述 | 第44-63页 |
摘要 | 第44页 |
引言 | 第44-45页 |
1. 溶酶体内水解酶 | 第45-46页 |
2. 溶酶体膜通透性改变的相关机制 | 第46-51页 |
2.1 活性氧 | 第47-49页 |
2.2 脂质和其代谢物 | 第49页 |
2.3 Bcl-2 家族的促凋亡成员 | 第49-50页 |
2.4 p53 | 第50-51页 |
3. 溶酶体与细胞凋亡通路 | 第51-54页 |
3.1 溶酶体在肿瘤细胞中的相关凋亡通路 | 第51-52页 |
3.2 溶酶体在非肿瘤细胞中的相关凋亡通路 | 第52-54页 |
4. 溶酶体相关疾病 | 第54页 |
5. 小节与展望 | 第54-56页 |
综述参考文献 | 第56-63页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第63-64页 |
致谢 | 第64-65页 |