| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 缩略语 | 第11-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-28页 |
| 1.1 多功能诊断治疗系统 | 第18-20页 |
| 1.2 四氧化三铁在肿瘤诊断治疗中的应用 | 第20-22页 |
| 1.3 上转换纳米粒在肿瘤诊断治疗中的应用 | 第22-25页 |
| 1.4 二氧化钛在肿瘤治疗中的应用 | 第25-26页 |
| 1.5 课题的提出 | 第26-28页 |
| 第二章 磁性Fe_3O_4的制备、表征及体内外光热效果评价 | 第28-64页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.1 材料 | 第28-29页 |
| 2.1.2 仪器 | 第29页 |
| 2.1.3 细胞及动物 | 第29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-36页 |
| 2.2.1 磁性Fe_3O_4的制备 | 第29-30页 |
| 2.2.2 Fe_3O_4@CMCTS的制备 | 第30页 |
| 2.2.3 ICG-Fe_3O_4@CMCTS的制备 | 第30页 |
| 2.2.4 FL标记的Fe_3O_4和Fe_3O_4@CMCTS的制备 | 第30-31页 |
| 2.2.5 金纳米囊(HAuNS)的合成 | 第31页 |
| 2.2.6 纳米粒的表征 | 第31-32页 |
| 2.2.7 Fe_3O_4@CMCTS的体外稳定性考察 | 第32页 |
| 2.2.8 BSA蛋白吸附实验 | 第32页 |
| 2.2.9 体外升温效果考察 | 第32-33页 |
| 2.2.10 空白载体的细胞毒性考察 | 第33页 |
| 2.2.11 Fe_3O_4@CMCTS的细胞摄取实验 | 第33页 |
| 2.2.12 体外光热效果研究 | 第33-34页 |
| 2.2.13 Fe_3O_4@CMCTS的体内过程研究 | 第34-35页 |
| 2.2.14 Fe_3O_4@CMCTS的体内光热治疗 | 第35-36页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第36-62页 |
| 2.3.1 Fe_3O_4、Fe_3O_4@CMCTS的制备 | 第36-37页 |
| 2.3.2 Fe_3O_4、Fe_3O_4@CMCTS的表征 | 第37-43页 |
| 2.3.3 Zeta电位 | 第43-44页 |
| 2.3.4 Fe_3O_4与Fe_3O_4@CMCTS在生理条件下的稳定性考察 | 第44-45页 |
| 2.3.5 蛋白吸附实验 | 第45-46页 |
| 2.3.6 横向弛豫率(r_2)的测定 | 第46-47页 |
| 2.3.7 体外光热效果测定 | 第47-49页 |
| 2.3.8 Fe_3O_4@CMCTS细胞毒性研究 | 第49-50页 |
| 2.3.9 Fe_3O_4@CMCTS的细胞摄取 | 第50-51页 |
| 2.3.10 Fe_3O_4@CMCTS体外光热抗肿瘤效果研究 | 第51-53页 |
| 2.3.11 Fe_3O_4@CMCTS的体内过程研究 | 第53-57页 |
| 2.3.12 Fe-3O-4@CMCTS的光热治疗研究 | 第57-60页 |
| 2.3.13 Fe_3O_4@CMCTS对正常组织的毒性考察 | 第60-62页 |
| 2.4 本章小结 | 第62-64页 |
| 第三章 NaYF_4纳米粒的制备及性质研究 | 第64-74页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第64-65页 |
| 3.1.1 材料 | 第64-65页 |
| 3.1.2 仪器 | 第65页 |
| 3.2 实验方法 | 第65-66页 |
| 3.2.1 NaYF_4纳米粒的制备 | 第65页 |
| 3.2.2 NaYF_4纳米粒的表征 | 第65-66页 |
| 3.2.3 细胞毒性实验 | 第66页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第66-73页 |
| 3.3.1 NaYF_4上转换纳米粒的形态及粒径 | 第67-68页 |
| 3.3.2 NaYF_4上转换纳米粒的晶型鉴定 | 第68-70页 |
| 3.3.3 NaYF_4上转换纳米粒的荧光光谱测定 | 第70-71页 |
| 3.3.4 NaYF_4上转换纳米粒的细胞毒性检测 | 第71-73页 |
| 3.4 本章小结 | 第73-74页 |
| 第四章 多功能HA-DCSNCs的制备及表征 | 第74-87页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第74-75页 |
| 4.1.1 材料 | 第74-75页 |
| 4.1.2 仪器 | 第75页 |
| 4.2 实验方法 | 第75-77页 |
| 4.2.1 DCSNCs的制备 | 第75页 |
| 4.2.2 透明质酸(HA)修饰的DCSNCs(HA-DCSNCs)的制备 | 第75-76页 |
| 4.2.3 DCSNCs及HA-DCSNCs的表征 | 第76页 |
| 4.2.4 HA-DCSNCs对阿霉素的负载 | 第76-77页 |
| 4.2.5 DOX的体外释放研究 | 第77页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第77-86页 |
| 4.3.1 DCSNCs与HA-DCSNCs的制备 | 第77-78页 |
| 4.3.2 DCSNCs与HA-DCSNCs的表征 | 第78-83页 |
| 4.3.3 DOX的负载 | 第83-85页 |
| 4.3.4 DOX的释放 | 第85-86页 |
| 4.4 本章小结 | 第86-87页 |
| 第五章 HA-DCSNCs体外声动力治疗效果研究 | 第87-101页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第87-88页 |
| 5.1.1 材料 | 第87-88页 |
| 5.1.2 仪器 | 第88页 |
| 5.1.3 细胞 | 第88页 |
| 5.2 实验方法 | 第88-91页 |
| 5.2.1 HA-DCSNCs的细胞毒性考察 | 第88页 |
| 5.2.2 HA-DCSNCs-DOX的细胞摄取 | 第88-89页 |
| 5.2.3 SDT及其与DOX联合应用的细胞毒性研究 | 第89-90页 |
| 5.2.4 SDT及其与DOX联合治疗诱导细胞凋亡研究 | 第90页 |
| 5.2.5 ROS的测定 | 第90-91页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第91-99页 |
| 5.3.1 HA-DCSNCs的细胞毒性 | 第91-92页 |
| 5.3.2 HA-DCSNCs-DOX的细胞摄取 | 第92-94页 |
| 5.3.3 SDT及其与DOX联合应用的细胞毒性研究 | 第94-96页 |
| 5.3.4 SDT及其与DOX联合治疗诱导细胞凋亡研究 | 第96-98页 |
| 5.3.5 ROS的测定 | 第98-99页 |
| 5.4 本章小结 | 第99-101页 |
| 第六章 HA-DCSNCs介导的SDT与DOX体内联合抗肿瘤研究 | 第101-118页 |
| 6.1 材料与仪器 | 第101-102页 |
| 6.1.1 材料 | 第101页 |
| 6.1.2 仪器 | 第101-102页 |
| 6.1.3 细胞及动物 | 第102页 |
| 6.2 实验方法 | 第102-104页 |
| 6.2.1 小鼠S180肉瘤模型的建立 | 第102页 |
| 6.2.2 HA-DCSNCs的体内上转换成像研究 | 第102-103页 |
| 6.2.3 HA-DCSNCs-DOX的体内分布研究 | 第103页 |
| 6.2.4 给药方案及药效学评价 | 第103-104页 |
| 6.2.5 组织病理学检查 | 第104页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第104-117页 |
| 6.3.1 HA-DCSNCs的体内上转换成像研究 | 第104-105页 |
| 6.3.2 HA-DCSNCs-DOX的体内分布研究 | 第105-110页 |
| 6.3.3 SDT及其与DOX联合抗肿瘤研究 | 第110-114页 |
| 6.3.4 免疫组化观察 | 第114-117页 |
| 6.4 本章小结 | 第117-118页 |
| 全文总结 | 第118-121页 |
| 全文主要结论 | 第118-120页 |
| 创新点与展望 | 第120-121页 |
| 参考文献 | 第121-132页 |
| 综述 | 第132-150页 |
| 参考文献 | 第141-150页 |
| 作者简历及在读期间所取得的科研成果 | 第150-151页 |
