| 附件 | 第5-6页 |
| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第22-42页 |
| 1.1 植物细胞壁组分及性质 | 第22-27页 |
| 1.1.1 果胶 | 第22-24页 |
| 1.1.2 半纤维素 | 第24-25页 |
| 1.1.3 纤维素 | 第25页 |
| 1.1.4 细胞壁蛋白 | 第25-27页 |
| 1.2 铜在细胞壁中的积累和分布 | 第27-28页 |
| 1.3 细胞壁在植物铜耐性中发挥的作用及机理 | 第28-33页 |
| 1.3.1 细胞壁多糖对铜胁迫的响应 | 第29-31页 |
| 1.3.2 细胞壁蛋白对铜的响应 | 第31-32页 |
| 1.3.3 细胞壁有关酶类对铜诱导的过氧化胁迫的响应 | 第32-33页 |
| 1.4 iTRAQ技术及其在差异蛋白质组学方面的应用 | 第33-37页 |
| 1.4.1 iTRAQ多重标记的基本原理 | 第34-35页 |
| 1.4.2 iTRAQ实验流程 | 第35页 |
| 1.4.3 iTRAQ技术的优点与不足 | 第35-36页 |
| 1.4.4 iTRAQ技术在植物的环境蛋白质组学方面的应用 | 第36-37页 |
| 1.5 论文的立项依据和研究内容 | 第37-42页 |
| 1.5.1 立体依据 | 第37-39页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第39-41页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第41-42页 |
| 第二章 海州香薷体内铜的亚细胞分布和化学形态 | 第42-58页 |
| 2.1 引言 | 第42-43页 |
| 2.2 材料和方法 | 第43-45页 |
| 2.2.1 植物材料培养 | 第43-44页 |
| 2.2.2 海州香薷胁迫处理 | 第44页 |
| 2.2.3 亚细胞提取 | 第44页 |
| 2.2.4 化学形态提取 | 第44页 |
| 2.2.5 QA/QC质量控制及统计、聚类分析 | 第44-45页 |
| 2.3 结果与分析 | 第45-54页 |
| 2.3.1 铜的亚细胞分布 | 第45-48页 |
| 2.3.2 铜在海州香薷体内的化学形态 | 第48-52页 |
| 2.3.3 分层聚类分析 | 第52-54页 |
| 2.4 讨论 | 第54-57页 |
| 2.5 小结 | 第57-58页 |
| 第三章 海州香薷根细胞壁对铜的吸附固定机制 | 第58-75页 |
| 3.1 引言 | 第58-59页 |
| 3.2 材料和方法 | 第59-60页 |
| 3.2.1 植物材料培养 | 第59页 |
| 3.2.2 海州香薷细胞壁的提取 | 第59页 |
| 3.2.3 细胞壁的化学改性 | 第59-60页 |
| 3.2.4 海州香薷细胞壁铜吸附的动力学实验 | 第60页 |
| 3.2.5 傅立叶变换红外光谱(FTIR)测定 | 第60页 |
| 3.3 结果与分析 | 第60-72页 |
| 3.3.1 Cu吸附动力学及吸附位点研究 | 第60-62页 |
| 3.3.2 化学改性前后红外光谱定性分析 | 第62-65页 |
| 3.3.3 吸附前后红外光谱分析 | 第65-72页 |
| 3.4 讨论 | 第72-74页 |
| 3.5 小结 | 第74-75页 |
| 第四章 铜胁迫下海州香薷细胞壁多糖组分的变化 | 第75-91页 |
| 4.1 引言 | 第75-77页 |
| 4.2 材料和方法 | 第77-79页 |
| 4.2.1 植物材料培养 | 第77页 |
| 4.2.2 海州香薷细胞壁的提取 | 第77-78页 |
| 4.2.3 细胞壁多糖组分的分离及提取 | 第78页 |
| 4.2.4 细胞壁多糖组分的测定方法 | 第78-79页 |
| 4.3 结果 | 第79-87页 |
| 4.3.1 铜对海州香薷细胞壁组分总糖的影响 | 第79-83页 |
| 4.3.2 铜对海州香薷细胞壁半乳糖醛酸的影响 | 第83-86页 |
| 4.3.3 铜对海州香薷细胞壁果胶KDO的影响 | 第86-87页 |
| 4.4 讨论 | 第87-89页 |
| 4.5 小结 | 第89-91页 |
| 第五章 铜胁迫下海州香薷细胞壁蛋白的含量变化 | 第91-109页 |
| 5.1 引言 | 第91-92页 |
| 5.2 材料和方法 | 第92-97页 |
| 5.2.1 植物材料培养 | 第92-93页 |
| 5.2.2 海州香薷细胞壁的提取 | 第93-94页 |
| 5.2.3 铜含量的测定 | 第94页 |
| 5.2.4 细胞壁蛋白的提取方法 | 第94-96页 |
| 5.2.5 蛋白质含量测定 | 第96页 |
| 5.2.6 蛋白质分离 | 第96-97页 |
| 5.2.7 银染显色 | 第97页 |
| 5.2.8 数据统计与分析 | 第97页 |
| 5.3 结果与分析 | 第97-106页 |
| 5.3.1 细胞壁蛋白提取方法比较优化 | 第97-99页 |
| 5.3.2 不同浓度铜胁迫对海州香薷细胞壁铜离子及蛋白的影响 | 第99-101页 |
| 5.3.3 25μmol/L铜胁迫下海州香薷细胞壁铜离子及蛋白随时间的变化 | 第101-103页 |
| 5.3.4 50μmol/L铜胁迫下海州香薷细胞壁铜离子及蛋白随时间的变化 | 第103-106页 |
| 5.4 讨论 | 第106-108页 |
| 5.5 小结 | 第108-109页 |
| 第六章 iTRAQ结合LC-ESI-MS/MS技术分析铜胁迫下海州香薷根细胞壁蛋白质组差异表达 | 第109-153页 |
| 6.1 引言 | 第109-111页 |
| 6.2 材料和方法 | 第111-115页 |
| 6.2.1 试剂与仪器 | 第111页 |
| 6.2.2 植物材料培养及铜胁迫处理 | 第111-112页 |
| 6.2.3 海州香薷根细胞壁提取 | 第112页 |
| 6.2.4 根细胞壁组分的提取和测定 | 第112-113页 |
| 6.2.5 iTRAQ~(TM)试剂标记 | 第113页 |
| 6.2.6 肽段分离及LC-ESI-MS/MS质谱鉴定 | 第113-114页 |
| 6.2.7 生物信息学、统计及聚类分析 | 第114-115页 |
| 6.3 结果与分析 | 第115-144页 |
| 6.3.1 蛋白图谱检测结果 | 第115-117页 |
| 6.3.2 细胞壁蛋白的理化性质 | 第117-118页 |
| 6.3.3 细胞壁蛋白的图谱鉴定及相对定量 | 第118-136页 |
| 6.3.4 铜诱导细胞壁多糖的差异变化 | 第136-138页 |
| 6.3.5 铜诱导细胞壁蛋白的差异表达 | 第138-141页 |
| 6.3.6 差异表达蛋白质的功能分析 | 第141-144页 |
| 6.4 讨论 | 第144-149页 |
| 6.5 小结 | 第149-153页 |
| 第七章 主要研究结论与研究展望 | 第153-157页 |
| 7.1 主要研究结论 | 第153-155页 |
| 7.1.1 海州香薷体内铜的亚细胞分布和化学形态 | 第153页 |
| 7.1.2 海州香薷根细胞壁对铜的吸附固定机制 | 第153-154页 |
| 7.1.3 铜胁迫下海州香薷细胞壁多糖组分的变化 | 第154页 |
| 7.1.4 海州香薷细胞壁蛋白分离与金属检测 | 第154-155页 |
| 7.1.5 iTRAQ结合LC-ESI-MS/MS技术分析铜胁迫下海州香薷根细胞壁蛋白质组差异表达 | 第155页 |
| 7.2 创新点 | 第155-156页 |
| 7.3 研究展望 | 第156-157页 |
| 参考文献 | 第157-168页 |
| 作者简历 | 第168页 |
| 读博期间的科研成果 | 第168-169页 |
