符号说明 | 第4-5页 |
项目资助 | 第5-9页 |
中文摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-12页 |
1 前言 | 第13-26页 |
1.1 蝇蛹金小蜂的简介 | 第13-16页 |
1.1.1 蝇蛹金小蜂Nasonia vitripennis的生物学特征 | 第13-14页 |
1.1.2 蝇蛹金小蜂N.vitripennis的生活史 | 第14-15页 |
1.1.3 蝇蛹金小蜂N.vitripennis作为试验材料的优点 | 第15页 |
1.1.4 蝇蛹金小蜂N.vitripennis的用途 | 第15-16页 |
1.2 Wolbachia的简介 | 第16-23页 |
1.2.1 Wolbachia的分布与分类 | 第16-17页 |
1.2.2 Wolbachia的株系鉴定方法及分子检测方法 | 第17-19页 |
1.2.3 Wolbachia的传播方式 | 第19-20页 |
1.2.4 Wolbachia与寄主的相互作用 | 第20-21页 |
1.2.5 Wolbachia对寄主线粒体的影响 | 第21-22页 |
1.2.6 Wolbachia的应用研究 | 第22-23页 |
1.2.6.1 疟疾的防控 | 第22页 |
1.2.6.2 登革热病毒的防控 | 第22-23页 |
1.2.6.3 河盲病的治愈 | 第23页 |
1.3 抗生素处理技术的简介 | 第23-24页 |
1.4 昆虫适合度的简介 | 第24-25页 |
1.4.1 Wolbachia对种群适合度的促进作用 | 第24页 |
1.4.2 Wolbachia对种群适合度的抑制作用 | 第24-25页 |
1.5 蝇蛹金小蜂中Wolbachia的研究进展 | 第25-26页 |
1.5.1 蝇蛹金小蜂中感染Wolbachia株系的研究 | 第25页 |
1.5.2 Wolbachia与Nasonia属的物种形成 | 第25-26页 |
2 材料和方法 | 第26-35页 |
2.1 试验材料 | 第26-28页 |
2.1.1 试验昆虫 | 第26页 |
2.1.2 试验试剂 | 第26-27页 |
2.1.3 试验用引物 | 第27页 |
2.1.4 试验仪器 | 第27-28页 |
2.1.5 试验常用软件 | 第28页 |
2.1.6 培养基及试剂的配置 | 第28页 |
2.2 研究方法 | 第28-35页 |
2.2.1 昆虫基因组DNA的提取 | 第28-29页 |
2.2.2 PCR扩增和测序 | 第29-30页 |
2.2.3 DNA的纯化 | 第30-31页 |
2.2.4 DNA的连接转化 | 第31-32页 |
2.2.5 抗生素利福平的处理方法 | 第32-33页 |
2.2.6 蝇蛹金小蜂N.vitripennis出蜂量、性比的测定 | 第33页 |
2.2.7 蝇蛹金小蜂N.vitripennis寿命的测定 | 第33-34页 |
2.2.8 试验的技术路线 | 第34-35页 |
3 结果与分析 | 第35-41页 |
3.1 不同浓度利福平对蝇蛹金小蜂N.vitripennis的影响 | 第35-38页 |
3.1.1 不同浓度利福平处理对蝇蛹金小蜂体内Wolbachia的去除效果 | 第35页 |
3.1.2 不同浓度利福平对蝇蛹金小蜂N.vitripennis成活率的影响 | 第35-38页 |
3.2 利福平处理后对蝇蛹金小蜂N.vitripennis出蜂量的影响 | 第38-39页 |
3.3 利福平处理后对感染Wolbachia的蝇蛹金小蜂N.vitrpennis性比的影响 | 第39页 |
3.4 利福平处理后对蝇蛹金小蜂N.vitripennis寿命的影响 | 第39-41页 |
4 讨论 | 第41-44页 |
4.1 抗生素与内共生菌 | 第41-42页 |
4.2 内共生菌Wolbachia与寄主的关系 | 第42-43页 |
4.3 昆虫的适合度 | 第43-44页 |
5 结论 | 第44-45页 |
6 参考文献 | 第45-56页 |
7 附录 | 第56-59页 |
附录1 试验中所用蝇蛹金小蜂N.vitrpennis的CO Ⅰ序列 | 第56-57页 |
附录2 试验中所用麻蝇Sarcophaga marshalli的CO Ⅰ序列 | 第57-58页 |
附录3 试验中所用蝇蛹金小蜂Wolbachia的wsp基因序列 | 第58-59页 |
8 致谢 | 第59-61页 |
9 攻读学位期间发表论文情况 | 第61页 |