| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-22页 |
| 1.1 油菜杂种优势利用 | 第11-15页 |
| 1.1.1 油菜杂种优势利用概述 | 第11-12页 |
| 1.1.2 油菜杂种优势利用的途径 | 第12-14页 |
| 1.1.3 油菜杂种优势利用的发展趋势 | 第14-15页 |
| 1.2 光温敏雄性不育的相关研究 | 第15-20页 |
| 1.2.1 光温敏雄性不育材料的选育 | 第15-16页 |
| 1.2.2 光温敏雄性不育材料的光温反应 | 第16页 |
| 1.2.3 光温敏雄性不育材料的遗传研究 | 第16-17页 |
| 1.2.4 光温敏雄性不育材料的细胞学研究 | 第17-18页 |
| 1.2.5 光温敏雄性不育材料的基因定位 | 第18-19页 |
| 1.2.6 光温敏雄性不育材料的应用研究 | 第19-20页 |
| 1.3 十字花科植物花粉发育相关基因研究 | 第20-21页 |
| 1.4 本研究的目的与意义 | 第21-22页 |
| 第二章 SP2S 花药发育的温敏特性和细胞学研究 | 第22-32页 |
| 2.1 材料和方法 | 第22-24页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.2 SP2S 的温敏特性 | 第23页 |
| 2.1.3 SP2S 花粉粒生活力测定与醋酸洋红液染色观察 | 第23页 |
| 2.1.4 花药的半薄切片荧光显微镜观察 | 第23-24页 |
| 2.2 结果与分析 | 第24-29页 |
| 2.2.1 SP2S 的温敏特性 | 第24-25页 |
| 2.2.2 SP2S 醋酸洋红液染色观察与花粉粒生活力测定 | 第25-28页 |
| 2.2.3 甘蓝型油菜 SP2S 花药细胞的胼胝质荧光显微观察 | 第28-29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-32页 |
| 2.4.1 SP2S 的温度敏感期和临界温度 | 第29-30页 |
| 2.4.2 SP2S 的花粉粒生活力鉴定 | 第30页 |
| 2.4.3 温敏核不育花粉败育的细胞学特征 | 第30-32页 |
| 第三章 SP2S 的不育基因分子标记及 BnMSR66 基因克隆 | 第32-41页 |
| 3.1 材料 | 第32页 |
| 3.2 方法 | 第32-34页 |
| 3.2.1 田间取样 | 第32页 |
| 3.2.2 SSR 分析 | 第32-34页 |
| 3.2.3 BnMSR66 基因的克隆与生物信息学分析 | 第34页 |
| 3.3 结果与分析 | 第34-39页 |
| 3.3.1 SSR 引物筛选 | 第34-36页 |
| 3.3.2 BnMSR66 基因的生物信息学分析 | 第36-39页 |
| 3.4 讨论 | 第39-41页 |
| 3.4.1 光温敏雄性不育基因的分子标记 | 第39页 |
| 3.4.2 花粉发育过程相关基因的研究 | 第39-41页 |
| 第四章 SP2S 小孢子释放相关基因的 RT-PCR | 第41-50页 |
| 4.1 材料与方法 | 第41页 |
| 4.1.1 材料及处理 | 第41页 |
| 4.1.2 仪器以及试剂 | 第41页 |
| 4.2 方法 | 第41-44页 |
| 4.2.1 供试材料总 RNA 的提取 | 第41页 |
| 4.2.2 甘蓝型油菜总 RNA 的纯化 | 第41-42页 |
| 4.2.3 第一条链 cDNA 的合成 | 第42页 |
| 4.2.4 荧光定量引物的设计与合成 | 第42-43页 |
| 4.2.5 特异引物 PCR 扩增 | 第43页 |
| 4.2.6 荧光定量 RT-PCR 反应体系及条件优化 | 第43-44页 |
| 4.3 结果与分析 | 第44-48页 |
| 4.3.1 总 RNA 完整性及纯度检测 | 第44页 |
| 4.3.2 PCR 扩增检测 | 第44-45页 |
| 4.3.3 小孢子释放相关基因的定量分析 | 第45-48页 |
| 4.4 讨论 | 第48-50页 |
| 第五章 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62页 |
