摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
英文缩略词 | 第11-15页 |
第一部分 :PD-1/PD-L1、CD3在喉及下咽鳞状细胞癌中的表达及临床意义 | 第15-28页 |
1 前言 | 第15-17页 |
2 材料和方法 | 第17-20页 |
2.1 研究对象 | 第17页 |
2.2 实验试剂 | 第17页 |
2.3 实验仪器 | 第17-18页 |
2.4 HE染色 | 第18页 |
2.5 免疫组化 | 第18页 |
2.6 Tunel染色 | 第18-19页 |
2.7 免疫组化以及凋亡染色评估方法 | 第19页 |
2.8 统计方法 | 第19-20页 |
3 结果 | 第20-25页 |
3.1 病例特点 | 第20页 |
3.2 CD3、PD-1和PD-L1蛋白表达与患者临床病理特征的关系 | 第20-24页 |
3.2.1 CD3、PD-1和PD-L1蛋白在LSCC(HSCC)组织中的表达. | 第20-21页 |
3.2.2 LSCC(HSCC)组织中CD3、PD-1和PD-L1表达与临床病理特征的关系 | 第21-24页 |
3.3 喉癌组织细胞凋亡水平及与病理特征的关系 | 第24-25页 |
4 讨论 | 第25-27页 |
5 结论 | 第27-28页 |
第二部分 :APE1通过NF-κB通路调节PD-L1在喉鳞状细胞癌中的表达 | 第28-39页 |
1 前言 | 第28-29页 |
2 材料和方法 | 第29-33页 |
2.1 材料 | 第29页 |
2.2 主要试剂 | 第29页 |
2.3 实验仪器 | 第29-30页 |
2.4 实时定量PCR检测APE1、PD-L1在喉癌以及癌旁组织的基因表达水平 | 第30-31页 |
2.5 细胞培养、APE1-siRNA转染、LPS/PDTC干预 | 第31页 |
2.6 Westernblot检测APE1、PD-L1、NF-κB、pNF-κB蛋白表达情况 | 第31-32页 |
2.7 统计分析 | 第32-33页 |
3 结果 | 第33-37页 |
3.1 Real-TimePCR检测PD-L1、APE1基因在临床样本中的表达水平 | 第33页 |
3.2 APE1-siRNA转染Hep-2细胞对APE1、PD-L1表达的影响 | 第33-34页 |
3.3 APE1对PD-L1的影响依赖NF-κB信号通路 | 第34-37页 |
4.讨论 | 第37-38页 |
5 结论 | 第38-39页 |
本文创新性自我评价 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-45页 |
综述 | 第45-57页 |
参考文献 | 第52-57页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第57-58页 |
致谢 | 第58-59页 |
个人简历 | 第59页 |