摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
英文缩略语 | 第11-16页 |
第一部分 :Wistar大鼠CIA关节模型的建立及最佳LDN治疗浓度的确定 | 第16-31页 |
1 前言 | 第16-17页 |
2 材料和方法 | 第17-20页 |
2.1 实验材料 | 第17-18页 |
2.1.1 实验对象 | 第17页 |
2.1.2 主要试剂和耗材 | 第17-18页 |
2.1.3 主要仪器 | 第18页 |
2.1.4 统计结果分析方法及相关软件 | 第18页 |
2.2 实验方法 | 第18-20页 |
2.2.1 实验动物分组 | 第18页 |
2.2.2 CIA大鼠关节炎模型的建立 | 第18-19页 |
2.2.3 取材与包埋 | 第19页 |
2.2.4 滑膜组织及踝关节HE染色观察病理学变化 | 第19页 |
2.2.5 观察指标 | 第19-20页 |
3 实验结果 | 第20-27页 |
3.1 大鼠体重变化情况 | 第20-22页 |
3.2 大鼠一般形态学观察及关节病变严重程度 | 第22-23页 |
3.3 大鼠关节滑膜组织病理学变化 | 第23-27页 |
4 讨论 | 第27-30页 |
5 结论 | 第30-31页 |
第二部分 :LDN对Wistar大鼠关节炎症调节的相关机制研究 | 第31-50页 |
1 前言 | 第31-32页 |
2 材料和方法 | 第32-37页 |
2.1 实验材料 | 第32-33页 |
2.1.1 实验对象 | 第32页 |
2.1.2 主要试剂和耗材 | 第32-33页 |
2.1.3 主要仪器 | 第33页 |
2.1.4 统计结果分析方法及相关软件 | 第33页 |
2.2 实验方法 | 第33-37页 |
2.2.1 实验动物分组 | 第33页 |
2.2.2 大鼠脾内淋巴细胞的提取 | 第33-34页 |
2.2.3 流式细胞术检测大鼠脾淋巴细胞亚群的变化 | 第34-36页 |
2.2.4 ELISA方法检测大鼠外周血清中细胞因子含量 | 第36-37页 |
3 结果 | 第37-44页 |
3.1 流式细胞术检测大鼠脾淋巴细胞亚群的变化 | 第37-42页 |
3.1.1 CD4+T和CD8+T细胞 | 第37-39页 |
3.1.2 Th1与Th | 第39-40页 |
3.1.3 Treg | 第40-41页 |
3.1.4 Th17 | 第41-42页 |
3.2 ELISA方法检测大鼠外周血清中细胞因子含量 | 第42-44页 |
4 讨论 | 第44-49页 |
5 结论 | 第49-50页 |
第三部分 :LDN对阿片受体在组织中分布及表达的影响 | 第50-69页 |
1 前言 | 第50-51页 |
2 材料与方法 | 第51-58页 |
2.1 实验材料 | 第51-52页 |
2.1.1 实验对象 | 第51页 |
2.1.2 主要试剂和耗材 | 第51页 |
2.1.3 主要仪器 | 第51-52页 |
2.1.4 统计结果分析方法及相关软件 | 第52页 |
2.2 实验方法 | 第52-58页 |
2.2.1 实验动物分组 | 第52页 |
2.2.2 免疫组化法检测阿片受体在大鼠踝关节的表达情况 | 第52-53页 |
2.2.3 实时PCR检测大鼠脾脏及膝关节滑膜组织中阿片受体的表达情况 | 第53-56页 |
2.2.4 大鼠脾脏蛋白的提取及定量 | 第56页 |
2.2.5 免疫印迹法检测大鼠脾脏淋巴细胞中阿片受体及相关信号分子的表达情况 | 第56-58页 |
3 结果 | 第58-63页 |
3.1 阿片受体在大鼠踝关节的表达情况 | 第58-61页 |
3.2 大鼠滑膜组织中阿片受体mRNA的表达情况 | 第61-62页 |
3.3 大鼠脾脏淋巴细胞中阿片受体mRNA和蛋白的表达情况 | 第62页 |
3.4 大鼠脾脏及滑膜组织中相关信号分子的蛋白表达情况 | 第62-63页 |
4 讨论 | 第63-68页 |
5 结论 | 第68-69页 |
本研究创新性的自我评价 | 第69-70页 |
参考文献 | 第70-77页 |
综述 | 第77-88页 |
参考文献 | 第82-88页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第88-89页 |
致谢 | 第89-90页 |
个人简历 | 第90页 |