中文摘要 | 第4-9页 |
Abstract | 第9-14页 |
英文缩略语 | 第15-19页 |
第一部分 :CB2R在癫痫幼鼠海马组织的表达规律的研究 | 第19-41页 |
1 前言 | 第19-20页 |
2 材料与方法 | 第20-30页 |
2.1 材料 | 第20-21页 |
2.1.1 实验动物 | 第20页 |
2.1.2 实验仪器 | 第20页 |
2.1.3 实验试剂 | 第20-21页 |
2.2 方法 | 第21-30页 |
2.2.1 实验动物及分组 | 第21页 |
2.2.2 匹鲁卡品癫痫模型的建立 | 第21-22页 |
2.2.3 免疫组化检测大鼠海马和大脑皮层中CB2R的表达与定位。 | 第22-30页 |
3 结果 | 第30-37页 |
3.1 幼年大鼠癫痫模型建立和行为学观察 | 第30页 |
3.2 癫痫幼年大鼠海马CB2R的表达 | 第30-37页 |
4 讨论 | 第37-40页 |
5 结论 | 第40-41页 |
第二部分 :调控CB2R-PI3K/AKT通路对癫痫幼鼠海马组织保护机制的研究 | 第41-55页 |
1 前言 | 第41-42页 |
2 材料与方法 | 第42-44页 |
2.1 材料 | 第42-43页 |
2.1.1 实验动物 | 第42页 |
2.1.2 实验仪器 | 第42-43页 |
2.2 方法 | 第43-44页 |
2.2.1 实验动物 | 第43页 |
2.2.2 匹鲁卡品癫痫模型的建立 | 第43页 |
2.2.3 尼氏染色检测癫痫持续状态后幼年大鼠海马神经元变化情况 | 第43-44页 |
2.2.4 免疫组化检测癫痫幼年大鼠海马区GFAP表达 | 第44页 |
2.2.5 Westernblot检测癫痫持续状态后幼年大鼠海马PI3K/AKT通路(PI3K,p-AKT,AKT) | 第44页 |
3 结果 | 第44-50页 |
3.1 调控CB2R对幼年大鼠癫痫后早期行为学影响 | 第44-45页 |
3.2 调控CB2R对幼年癫痫大鼠神经元的保护作用 | 第45-47页 |
3.3 调控CB2R对幼年癫痫大鼠星型胶质细胞的作用 | 第47-48页 |
3.3.1 CB2R对癫痫幼年大鼠海马中GFAP海马区表达 | 第47-48页 |
3.3.2 CB2R对癫痫幼年大鼠的海马GFAP蛋白的影响 | 第48页 |
3.4 调控CB2R对幼年大鼠癫痫后海马PI3K/AKT通路蛋白(PI3K、AKT,p-AKT)的影响 | 第48-50页 |
4 讨论 | 第50-53页 |
5 结论 | 第53-55页 |
第三部分 :调控CB2R-PI3K/AKT通路对星形胶质细胞增殖活性的作用机制研究 | 第55-73页 |
1 前言 | 第55-56页 |
2 材料与方法 | 第56-59页 |
2.1 材料 | 第56-57页 |
2.1.1 实验细胞 | 第56页 |
2.1.2 实验分组 | 第56页 |
2.1.3 实验药物 | 第56-57页 |
2.1.4 主要仪器 | 第57页 |
2.2 方法 | 第57-59页 |
2.2.1 星形胶质细胞细胞的复苏和培养 | 第57-58页 |
2.2.2 流式细胞仪分析各组AST的细胞周期 | 第58页 |
2.2.3 Westernblot检测无镁溶液处理AST后PI3K/AKT通路中蛋白及细胞增殖蛋白的变化情况 | 第58-59页 |
2.2.4 统计分析 | 第59页 |
3 结果 | 第59-66页 |
3.1 调控CB2R对星形胶质细胞增殖活性的影响 | 第59-62页 |
3.1.1 调控CB2R对星形胶质细胞增殖蛋白的影响 | 第59-61页 |
3.1.2 流式细胞仪检测细胞周期 | 第61-62页 |
3.2 CB2R对大鼠星形胶质细胞PI3K/AKT通路的影响 | 第62-64页 |
3.3 阻断PI3K/AKT通路后星形胶质细胞增殖活性的变化 | 第64-66页 |
3.3.1 Wortmannin对星形胶质细胞PI3K/AKT的影响 | 第64页 |
3.3.2 Wortmannin处理后对星形胶质细胞增殖活性的影响 | 第64-66页 |
4 讨论 | 第66-71页 |
5 结论 | 第71-73页 |
创新性分析 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-83页 |
综述 | 第83-98页 |
参考文献 | 第91-98页 |
在学期间科研成绩 | 第98-99页 |
致谢 | 第99-100页 |
个人简介 | 第100页 |