摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
第一部分 褐藻多酚Eckol抗肿瘤作用研究 | 第12-26页 |
1 前言 | 第12-13页 |
2 实验材料 | 第13-15页 |
2.1 实验动物及细胞系 | 第13页 |
2.2 试剂 | 第13-15页 |
2.3 仪器 | 第15页 |
3 实验方法 | 第15-20页 |
3.1 S180细胞培养 | 第15-16页 |
3.2 移植型S180腹水瘤小鼠荷瘤模型的建立及干预 | 第16页 |
3.3 移植型S180肉瘤小鼠荷瘤模型的建立及干预 | 第16-17页 |
3.4 石蜡切片及HE染色 | 第17页 |
3.5 TUNEL法检测肿瘤组织细胞凋亡 | 第17-18页 |
3.6 WesternBlot检测 | 第18-20页 |
4 统计学分析 | 第20页 |
5 结果 | 第20-24页 |
5.1 Eckol延长移植型S180腹水瘤荷瘤小鼠生存天数 | 第20页 |
5.2 Eckol对移植型S180肉瘤荷瘤小鼠的保护作用 | 第20-21页 |
5.3 Eckol对肿瘤组织病理的影响 | 第21-22页 |
5.4 Eckol促进肿瘤细胞凋亡 | 第22-23页 |
5.5 Eckol对细胞增殖及凋亡相关分子表达的影响 | 第23-24页 |
6 讨论 | 第24-25页 |
7 小结 | 第25-26页 |
第二部分 Eckol体内调节荷瘤小鼠免疫功能 | 第26-41页 |
1 前言 | 第26-27页 |
2 实验材料 | 第27-28页 |
2.1 实验动物及细胞系 | 第27页 |
2.2 试剂 | 第27-28页 |
2.3 仪器 | 第28页 |
3 实验方法 | 第28-31页 |
3.1 移植型S180肉瘤荷瘤小鼠模型的建立 | 第28页 |
3.2 ELISA法 | 第28-29页 |
3.3 碳粒廓清法 | 第29页 |
3.4 脾淋巴细胞增殖实验 | 第29页 |
3.5 小鼠外周血T淋巴细胞亚群检测(CD3、CD4、CD8及CD4/CD8) | 第29-30页 |
3.6 免疫组化法检测肿瘤组织DCs浸润 | 第30-31页 |
3.7 髓源性DCs表型检测 | 第31页 |
4 统计学分析 | 第31页 |
5 结果 | 第31-38页 |
5.1 Eckol对移植型S180肉瘤荷瘤小鼠血清细胞因子水平的影响 | 第31-32页 |
5.2 Eckol提高移植型S180肉瘤荷瘤小鼠外周血单核-吞噬细胞功能 | 第32-34页 |
5.3 Eckol促进移植型S180肉瘤荷瘤小鼠脾淋巴细胞转化 | 第34页 |
5.4 Eckol提高移植型S180肉瘤荷瘤小鼠外周血CD4+T细胞比率 | 第34-35页 |
5.5 Eckol促进肿瘤组织DCs的浸润 | 第35-36页 |
5.6 Eckol促进荷瘤小鼠髓源性DCs成熟 | 第36-38页 |
6 讨论 | 第38-40页 |
7 小结 | 第40-41页 |
第三部分 Eckol抑制胰腺炎症相关因子Reg3A诱导的人胰腺癌SW1990细胞过度增殖 | 第41-55页 |
1 前言 | 第41-42页 |
2 实验材料 | 第42-43页 |
2.1 细胞株 | 第42页 |
2.2 试剂 | 第42-43页 |
2.3 仪器 | 第43页 |
3 实验方法 | 第43-46页 |
3.1 MTT法 | 第43-44页 |
3.2 细胞周期检测 | 第44页 |
3.3 软琼脂克隆形成实验 | 第44-45页 |
3.4 RealTimePCR检测 | 第45-46页 |
3.5 WesternBlot检测 | 第46页 |
4 统计学分析 | 第46-47页 |
5 结果 | 第47-52页 |
5.1 Eckol对抗Reg3A诱导的SW1990细胞过度增殖 | 第47页 |
5.2 Eckol阻滞Reg3A诱导的SW1990细胞周期进程 | 第47页 |
5.3 Eckol抑制Reg3A诱导的SW1990细胞软琼脂克隆的形成 | 第47-50页 |
5.4 Eckol对Reg3A诱导的SW1990细胞过度增殖的保护作用可能与JAK2/STAT3通路和NF-κB/CyclinD1通路相关 | 第50-52页 |
6 讨论 | 第52-54页 |
7 小结 | 第54-55页 |
结论 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-61页 |
综述 | 第61-74页 |
参考文献 | 第66-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
附录1 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第75-76页 |
附录2 攻读硕士学位期间参加的科研项目 | 第76页 |