| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第1章 文献综述 | 第17-31页 |
| 1.1 Survivin 与肿瘤 | 第17-22页 |
| 1.1.1 Survivin 简介 | 第17页 |
| 1.1.2 Survivin 的结构及其组成 | 第17-18页 |
| 1.1.3 Survivin 基因表达的调控 | 第18-19页 |
| 1.1.4 Survivin 在肿瘤细胞中的生物学功能 | 第19-20页 |
| 1.1.5 Survivin 与 Caspase-3 的关系 | 第20-22页 |
| 1.1.6 Survivin 在肿瘤诊断和治疗中的意义 | 第22页 |
| 1.2 组蛋白去乙酰化与肿瘤 | 第22-27页 |
| 1.2.1 肿瘤中的组蛋白乙酰化与去乙酰化 | 第22-25页 |
| 1.2.2 组蛋白去乙酰化酶抑制剂曲古菌素 A 与肿瘤的治疗 | 第25-27页 |
| 1.3 神经胶质瘤的临床治疗及研究进展 | 第27-31页 |
| 1.3.1 神经胶质瘤简介及治疗现状 | 第27-29页 |
| 1.3.2 Survivin 在神经胶质瘤发生、发展中的作用 | 第29页 |
| 1.3.3 TSA 对神经胶质瘤的作用 | 第29-31页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第31-41页 |
| 2.1 实验用细胞株 | 第31页 |
| 2.2 主要仪器设备 | 第31页 |
| 2.3 主要试剂 | 第31-33页 |
| 2.4 主要试剂的配制 | 第33-35页 |
| 2.5 PC12 细胞及 C6 细胞的培养 | 第35-36页 |
| 2.6 CCK-8 试剂盒测定 TSA 及 Valproate 的工作浓度 | 第36-37页 |
| 2.7 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第37-38页 |
| 2.8 HDAC 活性试剂盒检测 PC12 和 C6 细胞中的 HDAC 活性 | 第38页 |
| 2.9 免疫荧光染色 | 第38-39页 |
| 2.10 Western Blot 检测细胞中 Survivin 和 Caspase-3 的表达 | 第39-40页 |
| 2.11 统计学分析 | 第40-41页 |
| 第3章 实验结果 | 第41-61页 |
| 3.1 TSA 对 PC12 细胞和 C6 细胞的作用 | 第41-43页 |
| 3.1.1 TSA 对 PC12 细胞和 C6 细胞的毒性作用 | 第41-42页 |
| 3.1.2 TSA 对 PC12 细胞和 C6 细胞凋亡的影响 | 第42-43页 |
| 3.2 TSA 对 PC12 细胞和 C6 细胞中第Ⅰ类 HDACs 活性的影响 | 第43-46页 |
| 3.3 TSA 对 PC12 细胞和 C6 细胞中 Survivin 的影响 | 第46-51页 |
| 3.4 TSA 对 PC12 细胞和 C6 细胞中 Caspase-3 的影响 | 第51-54页 |
| 3.5 丙戊酸钠（Valproate）工作浓度的确定 | 第54-55页 |
| 3.6 Valproate 对 PC12 细胞和 C6 细胞中第Ⅰ类 HDACs 活性的影响 | 第55-58页 |
| 3.7 Valproate 对 PC12 细胞和 C6 细胞中 Survivin 的影响 | 第58页 |
| 3.8 Valproate 对 PC12 细胞和 C6 细胞中 Caspase-3 的影响 | 第58-61页 |
| 第4章 讨论 | 第61-66页 |
| 第5章 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
