| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第13-24页 |
| 1.1 研究意义 | 第13-14页 |
| 1.2 卵母细胞低温保存的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.3 卵母细胞的冷冻方法 | 第16-20页 |
| 1.3.1 卵母细胞冷冻方法的分类 | 第16-17页 |
| 1.3.2 卵母细胞玻璃化冷冻 | 第17-20页 |
| 1.4 复温过程对卵母细胞低温保存的影响 | 第20-21页 |
| 1.5 纳米颗粒在低温生物学中的应用 | 第21-22页 |
| 1.6 本文研究内容 | 第22-24页 |
| 第二章 Cryotop 载体冷冻速率的优化与测量 | 第24-40页 |
| 2.1 Cryotop 传热性能优化的模拟计算 | 第24-31页 |
| 2.1.1 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.1.2 载体厚度对 Cryotop 冷冻速率的影响 | 第27-28页 |
| 2.1.3 冷冻保护液体积对 Cryotop 冷冻速率的影响 | 第28-29页 |
| 2.1.4 冷源温度对 Cryotop 冷冻速率的影响 | 第29-30页 |
| 2.1.5 对流换热系数对 Cryotop 冷冻速率的影响 | 第30-31页 |
| 2.2 高速测温系统对 Cryotop 冷冻速率的测量 | 第31-38页 |
| 2.2.1 材料与方法 | 第32-36页 |
| 2.2.2 Cryotop 在液氮中的冷冻速率 | 第36-37页 |
| 2.2.3 Cryotop 在浆态氮中的冷冻速率 | 第37页 |
| 2.2.4 商品化 Cryotop 与自制铜 Cryotop 冷冻速率的比较 | 第37页 |
| 2.2.5 不同厚度铜 Cryotop 冷冻速率的比较 | 第37-38页 |
| 2.3 本章结论 | 第38-40页 |
| 第三章 冷冻过程对卵母细胞玻璃化保存效果的影响 | 第40-48页 |
| 3.1 载体厚度对猪 MⅡ期卵母细胞玻璃化保存效果的影响 | 第40-43页 |
| 3.1.1 材料与方法 | 第40-43页 |
| 3.1.2 结果 | 第43页 |
| 3.2 浆状氮对猪 MⅡ期卵母细胞玻璃化保存效果的影响 | 第43-44页 |
| 3.2.1 材料和方法 | 第43-44页 |
| 3.2.2 结果 | 第44页 |
| 3.3 铜 Cryotop 对小鼠 GV 期卵母细胞玻璃化保存效果的影响 | 第44-46页 |
| 3.3.1 材料与方法 | 第45-46页 |
| 3.3.2 结果 | 第46页 |
| 3.4 本章结论 | 第46-48页 |
| 第四章 卵母细胞低温保护剂溶液结晶性质研究 | 第48-63页 |
| 4.1 卵母细胞低温保护剂溶液重结晶的显微研究 | 第48-53页 |
| 4.1.1 材料与方法 | 第48-50页 |
| 4.1.2 升温速率对低温保护剂溶液再结晶形态的影响 | 第50-52页 |
| 4.1.3 升温速率对低温保护剂溶液再结晶时间和危险温度区间的影响 | 第52-53页 |
| 4.2 纳米低温保护剂溶液重结晶的显微研究 | 第53-58页 |
| 4.2.1 材料与方法 | 第53-54页 |
| 4.2.2 纳米低温保护剂溶液结晶、再结晶、融化的显微图像 | 第54-56页 |
| 4.2.3 纳米低温保护剂溶液的结晶温度和再结晶温度 | 第56-58页 |
| 4.3 纳米低温保护剂结晶焓的研究 | 第58-61页 |
| 4.3.1 仪器与方法 | 第58-60页 |
| 4.3.2 结果与讨论 | 第60-61页 |
| 4.4 本章结论 | 第61-63页 |
| 第五章 纳米颗粒在低温保护剂中的稳定性研究 | 第63-70页 |
| 5.1 材料与方法 | 第63-65页 |
| 5.1.1 仪器设备 | 第63-64页 |
| 5.1.2 药品 | 第64页 |
| 5.1.3 低温保护剂的配制 | 第64页 |
| 5.1.4 分散效果评估体系的建立 | 第64-65页 |
| 5.2 结果 | 第65-69页 |
| 5.2.1 超声时间对不同纳米粒子在低温保护剂中分散效果的影响 | 第65-66页 |
| 5.2.2 不同纳米粒子在低温保护剂中的沉降时间 | 第66-67页 |
| 5.2.3 pH 值对不同纳米粒子在低温保护剂中分散效果的影响 | 第67-68页 |
| 5.2.4 低温保护剂浓度对不同纳米粒子在低温保护剂中分散效果的影响 | 第68-69页 |
| 5.3 本章结论 | 第69-70页 |
| 第六章 纳米颗粒对卵母细胞玻璃化保存效果的影响 | 第70-77页 |
| 6.1 实验设备与材料 | 第70-71页 |
| 6.1.1 主要仪器和设备 | 第70页 |
| 6.1.2 主要试剂 | 第70页 |
| 6.1.3 玻璃化冷冻/解冻液 | 第70页 |
| 6.1.4 猪卵母细胞的采集及 GV 期、MⅡ期卵母细胞的获得 | 第70页 |
| 6.1.5 纳米颗粒毒性判定 | 第70-71页 |
| 6.1.6 卵母细胞玻璃化冷冻及解冻程序 | 第71页 |
| 6.1.7 猪 GV 期卵母细胞解冻后存活率和发育率判断 | 第71页 |
| 6.1.8 猪 MⅡ期卵母细胞解冻后存活率判断 | 第71页 |
| 6.2 结果与讨论 | 第71-76页 |
| 6.2.1 不同纳米颗粒对猪 GV 期卵母细胞的毒性 | 第71-72页 |
| 6.2.2 不同纳米颗粒对猪 GV 期卵母细胞冷冻效果的影响 | 第72-73页 |
| 6.2.3 不同粒径的 HA 纳米颗粒对猪 GV 期卵母细胞冷冻效果的影响 | 第73-74页 |
| 6.2.4 HA 浓度对猪 GV 期卵母细胞冷冻效果的影响 | 第74-75页 |
| 6.2.5 HA 纳米颗粒对猪 MII 期细胞冷冻效果的影响 | 第75-76页 |
| 6.3 本章结论 | 第76-77页 |
| 第七章 结论及展望 | 第77-80页 |
| 7.1 结论 | 第77-79页 |
| 7.2 展望 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-90页 |
| 在读期间公开发表的论文和承担科研项目及取得成果 | 第90-92页 |
| 致谢 | 第92页 |
