| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 1 前言 | 第11-18页 |
| 1.1 海洋浮游桡足类的研究背景 | 第11-12页 |
| 1.2 海洋浮游桡足类的摄食行为研究进展 | 第12-14页 |
| 1.3 DNA 基因序列分析在桡足类研究中的应用 | 第14-16页 |
| 1.4 本文研究的目的和意义 | 第16-18页 |
| 2 海洋浮游桡足类寄生性纤毛虫 18S rDNA 基因扩增的阻断 | 第18-43页 |
| 2.1 研究背景 | 第18-19页 |
| 2.1.1 纤毛虫的背景介绍 | 第18页 |
| 2.1.2 寄生性纤毛虫对海洋浮游桡足类的影响 | 第18-19页 |
| 2.2 材料与方法 | 第19-35页 |
| 2.2.1 材料 | 第19-20页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第20页 |
| 2.2.3 主要试剂及其配制 | 第20-23页 |
| 2.2.4 样品采集固定和实验室处理 | 第23-25页 |
| 2.2.5 阻断引物的设计 | 第25页 |
| 2.2.6 总基因组 DNA 的提取 | 第25-26页 |
| 2.2.7 琼脂糖凝胶电泳 | 第26-27页 |
| 2.2.8 18S rDNA 的 PCR 扩增及测序 | 第27-31页 |
| 2.2.9 阻断引物和阻断条件的测试 | 第31-35页 |
| 2.3 研究结果 | 第35-41页 |
| 2.3.1 藻类 18S rDNA 提取及纯化 | 第35-36页 |
| 2.3.2 寄生性纤毛虫 18S rDNA 提取及纯化 | 第36-38页 |
| 2.3.3 寄生性纤毛虫 18S rDNA 的阻断 | 第38-41页 |
| 2.4 讨论分析 | 第41-43页 |
| 2.4.1 最优阻断引物和退火条件 | 第41页 |
| 2.4.2 纤毛虫和硅藻 18S rDNA 基因的浓度估算 | 第41-42页 |
| 2.4.3 阻断效率的分析以及研究存在的问题 | 第42-43页 |
| 3 黄渤海中华哲水蚤的现场食物分析 | 第43-62页 |
| 3.1 研究背景 | 第43-44页 |
| 3.1.1 黄渤海浮游植物的种类分布 | 第43页 |
| 3.1.2 分子方法相比较其他传统方法检测的优势 | 第43-44页 |
| 3.2 研究材料与方法 | 第44-48页 |
| 3.2.1 材料 | 第44页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第44-45页 |
| 3.2.3 主要试剂及其配制 | 第45页 |
| 3.2.4 样品采集，固定和实验室处理 | 第45页 |
| 3.2.5 中华哲水蚤基因组 DNA 的提取 | 第45-46页 |
| 3.2.6 中华哲水蚤饵料食物 18S rDNA 基因的获得 | 第46-47页 |
| 3.2.7 序列分析 | 第47-48页 |
| 3.3 研究结果 | 第48-57页 |
| 3.3.1 中华哲水蚤 18S rDNA 的扩增及纯化 | 第48-49页 |
| 3.3.2 序列比对分析 | 第49-53页 |
| 3.3.3 N-J 系统进化树的构建 | 第53-56页 |
| 3.3.4 中华哲水蚤的现场食物组成 | 第56-57页 |
| 3.4 讨论分析 | 第57-62页 |
| 3.4.1 中华哲水蚤食物组成的分析 | 第57-60页 |
| 3.4.2 研究存在的问题和不足 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 个人简历 | 第76页 |
| 在学期间科研情况 | 第76-77页 |
