| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 前言 | 第10-19页 |
| 1.1 引言 | 第10-11页 |
| 1.1.1 重金属污染 | 第10页 |
| 1.1.2 钴的来源与危害 | 第10-11页 |
| 1.2 含钴废水主要处理方法 | 第11-13页 |
| 1.2.1 化学沉淀法 | 第11页 |
| 1.2.2 离子交换法 | 第11-12页 |
| 1.2.3 膜分离法 | 第12页 |
| 1.2.4 生物法 | 第12-13页 |
| 1.3 光合细菌对重金属离子的富集研究 | 第13-15页 |
| 1.3.1 野生光合菌富集重金属离子研究 | 第13-15页 |
| 1.3.2 基因工程光合菌富集重金属离子研究 | 第15页 |
| 1.4 蛋白质组学 | 第15-17页 |
| 1.4.1 蛋白质组学研究技术 | 第15-16页 |
| 1.4.2 蛋白组学分析微生物与重金属作用机理 | 第16-17页 |
| 1.5 研究目的和意义 | 第17-19页 |
| 第2章 沼泽红假单胞菌富集钴的研究 | 第19-29页 |
| 2.1 材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第20页 |
| 2.1.3 RCVBN培养基 | 第20-21页 |
| 2.2 方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 沼泽红假单胞菌富集钴的条件优化 | 第21-22页 |
| 2.2.2 钴在沼泽红假单胞菌中的分布 | 第22页 |
| 2.2.3 X-射线衍射 | 第22页 |
| 2.3 结果 | 第22-28页 |
| 2.3.1 沼泽红假单胞菌富集钴的条件优化 | 第22-25页 |
| 2.3.2 沼泽红假单胞菌对钴去除的动力学 | 第25-27页 |
| 2.3.3 钴在沼泽红假单胞菌中的分布 | 第27页 |
| 2.3.4 X-射线衍射分析 | 第27-28页 |
| 2.4 讨论 | 第28-29页 |
| 第3章 蛋白质的分离及质谱鉴定 | 第29-45页 |
| 3.1 材料 | 第29-31页 |
| 3.1.1 试剂 | 第29-30页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第30页 |
| 3.1.3 主要溶液配制 | 第30-31页 |
| 3.2 方法 | 第31-34页 |
| 3.2.1 蛋白质的提取 | 第31页 |
| 3.2.2 蛋白质的纯化 | 第31-32页 |
| 3.2.3 蛋白质的检测 | 第32页 |
| 3.2.4 双向凝胶电泳 | 第32-34页 |
| 3.2.5 蛋白胶内酶解 | 第34页 |
| 3.2.6 质谱检测 | 第34页 |
| 3.2.7 数据分析 | 第34页 |
| 3.3 结果 | 第34-41页 |
| 3.3.1 Bradford法测定蛋白质的标准曲线 | 第34-35页 |
| 3.3.2 双向电泳条件优化 | 第35-36页 |
| 3.3.3 差异蛋白谱图分析 | 第36-37页 |
| 3.3.4 质谱的鉴定分析 | 第37-41页 |
| 3.4 讨论 | 第41-45页 |
| 3.4.1 双向电泳方法优化讨论 | 第41页 |
| 3.4.2 质谱结果讨论 | 第41-45页 |
| 第4章 METK和PSTS蛋白基因的转录定量分析 | 第45-53页 |
| 4.1 材料 | 第45-46页 |
| 4.1.1 试剂 | 第45页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第45-46页 |
| 4.2 方法 | 第46-48页 |
| 4.2.1 沼泽红假单胞菌总RNA提取 | 第46页 |
| 4.2.2 逆转录反应 | 第46-47页 |
| 4.2.3 实时荧光定量PCR扩增 | 第47页 |
| 4.2.4 定量分析方法 | 第47-48页 |
| 4.3 结果 | 第48-51页 |
| 4.3.1 沼泽红假单胞菌RNA提取 | 第48页 |
| 4.3.2 16S rRNA标准曲线 | 第48-49页 |
| 4.3.3 实时荧光定量PCR结果 | 第49-50页 |
| 4.3.4 METK和PSTS基因表达差异比较 | 第50-51页 |
| 4.4 讨论 | 第51-53页 |
| 4.4.1 RNA的提取 | 第51页 |
| 4.4.2 qRT-PCR方法的选择 | 第51页 |
| 4.4.3 mRNA与蛋白质表达水平之间的分析 | 第51-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 攻读学位期间取得学术成果 | 第61-62页 |
| 附录 | 第62-74页 |