| 中英文缩写对照 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 1 前言 | 第14-16页 |
| 2 材料和方法 | 第16-29页 |
| 2.1 材料 | 第16-19页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第16-17页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第17-18页 |
| 2.1.3 主要试剂配置 | 第18-19页 |
| 2.2 方法 | 第19-29页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第19-20页 |
| 2.2.2 LukS-PV蛋白表达和纯化 | 第20-21页 |
| 2.2.3 蛋白定量 | 第21页 |
| 2.2.4 RNA的提取 | 第21-22页 |
| 2.2.5 基因芯片检测 | 第22页 |
| 2.2.6 qRT-PCR验证miR-125a-3p表达水平 | 第22-24页 |
| 2.2.7 慢病毒包装 | 第24页 |
| 2.2.8 miR-125a-3p慢病毒载体的转染 | 第24-25页 |
| 2.2.9 流式细胞术检测细胞表面分化抗原 | 第25页 |
| 2.2.10 qRT-PCR检测分化相关基因表达水平 | 第25-26页 |
| 2.2.11 Western Blot检测相关蛋白表达 | 第26-27页 |
| 2.2.12 miR-125a-3p作用靶基因预测 | 第27页 |
| 2.2.13 双荧光素酶报告基团 | 第27-28页 |
| 2.2.14 统计学分析 | 第28-29页 |
| 3 结果 | 第29-44页 |
| 3.1 LukS-PV刺激THP-1细胞过程中miRNA表达谱的变化 | 第29-32页 |
| 3.2 qRT-PCR验证miRNA芯片结果 | 第32-33页 |
| 3.3 miRNA-125a-3p过表达/抑制表达慢病毒载体转染THP-1细胞 | 第33-34页 |
| 3.4 上调miRNA-125a-3p的表达可以诱导THP-1细胞分化 | 第34-37页 |
| 3.5 下调miRNA-125a-3p表达可以抑制rLukS-PV诱导THP-1细胞分化的作用 | 第37-40页 |
| 3.6 生物信息学预测miRNA-125a-3p的靶基因 | 第40-42页 |
| 3.7 双荧光素酶报告基团验证NF1为miRNA-125a-3p的靶基因 | 第42-44页 |
| 4 讨论 | 第44-49页 |
| 5 结论 | 第49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 附录 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 综述 | 第57-67页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
