| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 前言 | 第7-12页 |
| 实验材料与实验方法 | 第12-42页 |
| 1. 实验材料 | 第12-18页 |
| 1.1 实验动物 | 第12-13页 |
| 1.2 菌株和细胞系 | 第13页 |
| 1.3 载体 | 第13-14页 |
| 1.4 试剂盒 | 第14-15页 |
| 1.5 主要化学试剂 | 第15-16页 |
| 1.6 主要仪器及设备 | 第16页 |
| 1.7 分析软件 | 第16页 |
| 1.8 引物序列 | 第16-18页 |
| 2. 实验方法 | 第18-42页 |
| 2.1 RNA提取 | 第18-19页 |
| 2.2 琼脂糖凝胶电泳 | 第19-20页 |
| 2.3 总RNA逆转成cDNA | 第20-21页 |
| 2.4 Real-Time PCR实验 | 第21-22页 |
| 2.5 细胞蛋白质的分离提取 | 第22-23页 |
| 2.6 BCA法测定蛋白质样品的浓度 | 第23-24页 |
| 2.7 Western blot | 第24-30页 |
| 2.8 细胞培养 | 第30-32页 |
| 2.9 小鼠肝原代细胞的分离以及培养 | 第32-33页 |
| 2.10 免疫荧光实验 | 第33-34页 |
| 2.11 IP实验,蛋白质乙酰化检测 | 第34-35页 |
| 2.12 细胞氧化应激产物的测定 | 第35页 |
| 2.13 病理实验 | 第35-38页 |
| 2.14 组织及血液TG,TC测定和血清FFA,葡萄糖测定 | 第38-41页 |
| 2.15 统计分析 | 第41-42页 |
| 实验结果 | 第42-50页 |
| 1. 雷公藤红素减轻高脂食野生型小鼠肝脂肪变性 | 第42-43页 |
| 2. 雷公藤红素增加肝脏抗炎和抗氧化能力 | 第43-44页 |
| 3. 雷公藤红素促进肝脏SIRT1的表达 | 第44-45页 |
| 4. 雷公藤红素通过SIRT1达到对高脂诱导肝脏脂肪变性的保护作用 | 第45-47页 |
| 5. 雷公藤红素通过SIRT1抑制炎性因子的表达提高抗氧化能力 | 第47-48页 |
| 6. 雷公藤红素减少肝AMPKα磷酸化和HDAC3表达 | 第48-50页 |
| 讨论 | 第50-53页 |
| 参考文献 | 第53-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62-63页 |
| 攻读硕士期间发表论文 | 第63-64页 |
