| 表格目录 | 第8-9页 |
| List of Tables | 第9-10页 |
| 图目录 | 第10-12页 |
| List of Figures | 第12-14页 |
| 中文摘要 | 第14-16页 |
| 英文摘要 | 第16页 |
| 第一章 文献综述：大麦黄花叶病毒属的研究进展 | 第17-52页 |
| 1．1 生物学 | 第17-23页 |
| 1．1．1 种类及分布 | 第17-18页 |
| 1．1．2 症状 | 第18-19页 |
| 1．1．3 寄主范围 | 第19-20页 |
| 1．1．4 经济损失 | 第20-21页 |
| 1．1．5 血清学 | 第21页 |
| 1．1．6 病理学特征 | 第21-22页 |
| 1．1．7 病毒流行学 | 第22页 |
| 1．1．8 病毒粒子 | 第22-23页 |
| 1．2 传播介体：禾谷多粘菌 | 第23-26页 |
| 1．2．1 生活史 | 第23-24页 |
| 1．2．2 分类地位、寄主范围和传播的病毒 | 第24-25页 |
| 1．2．3 病毒-介体关系 | 第25-26页 |
| 1．3 Bymovirus属病毒基因组结构和功能 | 第26-47页 |
| 1．3．1 基因组结构及特征 | 第27-38页 |
| 1．3．1．1 大麦黄花叶病毒（Barley yellow mosaic virus，BaYMV） | 第27-29页 |
| 1．3．1．1．1 BaYMV基因组结构及特征 | 第27-28页 |
| 1．3．1．1．2 中国BaYMV分离物的研究 | 第28-29页 |
| 1．3．1．2 大麦和性花叶病毒（Barley mild mosaic virus，BaMMV） | 第29-32页 |
| 1．3．1．2．1 BaMMV基因组结构及特征 | 第29-31页 |
| 1．3．1．2．2 中国BaMMV的研究 | 第31-32页 |
| 1．3．1．3 小麦黄花叶病毒（Wheat yellow mosaic virus，WYMV）和小麦梭条花叶病毒（Wheat spindle streak mosaic virus，WSSMV） | 第32-38页 |
| 1．3．1．3．1 基因组结构及特征 | 第32-35页 |
| 1．3．1．3．2 中国WYMV的研究 | 第35-36页 |
| 1．3．1．3．3 分子进化和株系分化 | 第36-38页 |
| 1．3．2 病毒基因组编码蛋白的功能 | 第38-47页 |
| 1．3．2．1 P1蛋白 | 第38-40页 |
| 1．3．2．2 P2蛋白 | 第40-41页 |
| 1．3．2．3 P3蛋白 | 第41页 |
| 1．3．2．4 6K1短肽 | 第41-42页 |
| 1．3．2．5 CI蛋白 | 第42-43页 |
| 1．3．2．6 6K2短肽 | 第43页 |
| 1．3．2．7 NIa蛋白 | 第43-45页 |
| 1．3．2．8 NIb蛋白 | 第45-46页 |
| 1．3．2．9 外壳蛋白 | 第46-47页 |
| 1．4 禾谷多粘菌传病毒的复合侵染以及大小麦对Bymovirus的抗性机理及抗病育种工作 | 第47-52页 |
| 1．4．1 禾谷多粘菌传病毒的复合侵染 | 第47页 |
| 1．4．2 大小麦对Bymovirus的抗性机理 | 第47-49页 |
| 1．4．3 Bymovirus的防治 | 第49-52页 |
| 1．4．3．1 生物防治 | 第49页 |
| 1．4．3．2 田间管理 | 第49-50页 |
| 1．4．3．3 化学防治 | 第50页 |
| 1．4．3．4 抗病育种 | 第50-52页 |
| 第二章 材料与方法 | 第52-74页 |
| 2．1 病叶 | 第52页 |
| 2．2 试剂 | 第52-53页 |
| 2．3 仪器 | 第53页 |
| 2．4 菌株和质粒 | 第53页 |
| 2．5 细菌和酵母的培养基 | 第53-54页 |
| 2．5．1 细菌的培养基 | 第53-54页 |
| 2．5．2 酵母的培养基 | 第54页 |
| 2．6 Bymovirus的提纯 | 第54-56页 |
| 2．6．1 试剂 | 第54-55页 |
| 2．6．2 步骤 | 第55-56页 |
| 2．7 电子显微镜技术 | 第56页 |
| 2．8 ELISA方法 | 第56-57页 |
| 2．8．1 试剂 | 第56-57页 |
| 2．8．2 步骤 | 第57页 |
| 2．9 病叶总RNA和病毒RNA抽提 | 第57-58页 |
| 2．9．1 病毒RNA提取（酚／氯仿法） | 第57-58页 |
| 2．9．2 试剂盒纯化 | 第58页 |
| 2．10 RT-PCR | 第58-59页 |
| 2．10．1 引物设计 | 第58页 |
| 2．10．2 cDNA第一链合成 | 第58-59页 |
| 2．10．3 PCR | 第59页 |
| 2．11 5’-和3’-RACE | 第59-62页 |
| 2．11．1 3’-RACE | 第59-61页 |
| 2．11．2 5’-RACE | 第61-62页 |
| 2．12 DNA克隆 | 第62-68页 |
| 2．12．1 限制性内切酶消化 | 第62-63页 |
| 2．12．2 DNA片段的切胶纯化 | 第63页 |
| 2．12．2．1 透析袋法 | 第63页 |
| 2．12．2．2 低熔点琼脂糖法 | 第63页 |
| 2．12．2．3 切胶纯化试剂盒法 | 第63页 |
| 2．12．3 连接反应 | 第63-64页 |
| 2．12．4 质粒转化宿主细菌 | 第64-65页 |
| 2．12．4．1 感受态细胞制备 | 第64-65页 |
| 2．12．4．2 转化 | 第65页 |
| 2．12．5 质粒转化酵母 | 第65-66页 |
| 2．12．5．1 感受态酵母的制备 | 第65-66页 |
| 2．12．5．2 转化 | 第66页 |
| 2．12．6 细菌转化子的筛选 | 第66-67页 |
| 2．12．6．1 试剂 | 第66-67页 |
| 2．12．6．2 步骤 | 第67页 |
| 2．12．7 质粒的抽提 | 第67-68页 |
| 2．12．7．1 试剂 | 第67页 |
| 2．12．7．2 步骤 | 第67-68页 |
| 2．12．8 试剂盒纯化质粒 | 第68页 |
| 2．13 DNA序列测定及分析 | 第68-69页 |
| 2．14 SDS-PAGE | 第69-71页 |
| 2．14．1 样品的制备 | 第69-70页 |
| 2．14．1．1 普通蛋白样品的制备 | 第69页 |
| 2．14．1．2 酵母蛋白的抽提 | 第69-70页 |
| 2．14．1．2．1 试剂 | 第69-70页 |
| 2．14．1．2．2 步骤 | 第70页 |
| 2．14．2 配胶 | 第70-71页 |
| 2．14．3 上样与电泳 | 第71页 |
| 2．14．4 染色与脱色 | 第71页 |
| 2．15 Western Blot | 第71-72页 |
| 2．15．1 试剂 | 第71-72页 |
| 2．15．2 转移 | 第72页 |
| 2．15．3 免疫显色反应 | 第72页 |
| 2．16 OMV病土毒力测试 | 第72-74页 |
| 2．16．1 病土来源 | 第72-73页 |
| 2．16．2 步骤 | 第73-74页 |
| 第三章 中国大麦和性花叶病毒存在的进一步证据及其外壳蛋白核苷酸序列 | 第74-82页 |
| 3．1 引言 | 第75页 |
| 3．2 材料与方法 | 第75-76页 |
| 3．2．1 材料 | 第75页 |
| 3．2．2 方法 | 第75-76页 |
| 3．2．2．1 病毒的提纯 | 第75页 |
| 3．2．2．2 病毒RNA的抽提 | 第75页 |
| 3．2．2．3 酶联免疫吸附反应 | 第75-76页 |
| 3．2．2．4 免疫吸附电镜 | 第76页 |
| 3．2．2．5 SDS-PAGE和Western-blot | 第76页 |
| 3．2．2．6 病毒外壳蛋白基因cDNA合成和PCR扩增方法 | 第76页 |
| 3．2．2．7 中国BaMMV外壳蛋白基因的克隆和测序 | 第76页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第76-82页 |
| 3．3．1 大麦和性花叶病毒的分布 | 第76-77页 |
| 3．3．2 中国BaMMV的特性 | 第77-78页 |
| 3．3．3 BaMMV外壳蛋白的测序与其它分离物的比较 | 第78-82页 |
| 第四章 燕麦花叶病毒全序列及RNA2缺失和重复突变 | 第82-101页 |
| 4．1 引言 | 第82-83页 |
| 4．2 材料 | 第83页 |
| 4．3 方法 | 第83-85页 |
| 4．3．1 OMV病土毒力的测定 | 第83页 |
| 4．3．2 病毒的提纯 | 第83页 |
| 4．3．3 病毒RNA的抽提 | 第83页 |
| 4．3．4 cDNA合成 | 第83页 |
| 4．3．5 RNA1全序列的测定 | 第83-84页 |
| 4．3．6 RNA2全序列的测定 | 第84页 |
| 4．3．7 RT-PCR产物的纯化与克隆 | 第84-85页 |
| 4．3．8 序列分析 | 第85页 |
| 4．4 结果与讨论 | 第85-101页 |
| 4．4．1 病土毒力的检测 | 第85页 |
| 4．4．2 病毒粒子特性 | 第85-86页 |
| 4．4．3 OMV RNA1核苷酸全序列及其编码的蛋白 | 第86-94页 |
| 4．4．4 OMV RNA1与其它Bymovirus成员以及其它进化相关属成员的比较 | 第94-96页 |
| 4．4．5 OMV RNA2核苷酸全序列及其编码的蛋白 | 第96-100页 |
| 4．4．6 OMV不同分离物之间的比较 | 第100-101页 |
| 第五章 燕麦花叶病毒NIa-VPg蛋白在酵母中的真核表达 | 第101-106页 |
| 5．1 引言 | 第101页 |
| 5．2 材料与方法 | 第101-103页 |
| 5．2．1 OMV RNA的抽提和cDNA的合成 | 第101页 |
| 5．2．2 OMV VPg目的基因的扩增和克隆 | 第101-102页 |
| 5．2．3 酵母表达载体的构建 | 第102-103页 |
| 5．2．4 VPg基因在酵母中的表达 | 第103页 |
| 5．2．5 Western-blot检测蛋白的表达 | 第103页 |
| 5．3 结果与讨论 | 第103-106页 |
| 5．3．1 OMV VPg基因的PCR扩增和克隆 | 第103-104页 |
| 5．3．2 VPg酵母表达质粒的检测 | 第104页 |
| 5．3．3 VPg基因在酵母中的表达 | 第104-105页 |
| 5．3．4 讨论 | 第105-106页 |
| 第六章 主要结论和进一步工作的建议 | 第106-108页 |
| 6．1 主要结论 | 第106页 |
| 6．2 进一步研究的建议 | 第106-108页 |
| 第七章 参考文献 | 第108-132页 |
| 博士研究生期间发表的论文 | 第132-133页 |
| 博士研究生期间形成的成果 | 第133-134页 |
| 致谢 | 第134页 |
