| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-14页 |
| 1.1 研究背景与研究意义 | 第10-12页 |
| 1.1.1 瘢痕治疗现状 | 第10页 |
| 1.1.2 自体脂肪颗粒移植修复瘢痕进展 | 第10-11页 |
| 1.1.3 增生性瘢痕发病机制 | 第11页 |
| 1.1.4 脂肪干细胞的抗纤维化作用 | 第11-12页 |
| 1.2 本实验的研究目的及研究内容 | 第12-14页 |
| 1.2.1 本实验的研究内容 | 第12-13页 |
| 1.2.2 本实验的研究目的 | 第13页 |
| 1.2.3 本研究的创新性 | 第13-14页 |
| 第二章 兔耳增生性瘢痕模型的建立 | 第14-20页 |
| 2.1 实验背景 | 第14-15页 |
| 2.1.1 起源 | 第14页 |
| 2.1.2 可用性 | 第14-15页 |
| 2.1.3 优越性 | 第15页 |
| 2.2 实验材料及方法 | 第15-17页 |
| 2.2.1 实验材料及试剂 | 第15页 |
| 2.2.2 兔耳瘢痕模型建立 | 第15-16页 |
| 2.2.3 注意事项 | 第16-17页 |
| 2.3 实验结果及分析 | 第17-18页 |
| 2.3.1 实验结果 | 第17页 |
| 2.3.2 结果分析 | 第17-18页 |
| 2.4 本章小结 | 第18-20页 |
| 2.4.1 兔耳瘢痕模型是一种较好的模拟人类皮肤病理性瘢痕的动物模型 | 第18-19页 |
| 2.4.2 本实验中成功的建立了稳定的兔耳增生性瘢痕模型 | 第19-20页 |
| 第三章 兔脂肪干细胞及条件培养基准备 | 第20-39页 |
| 3.1 引言 | 第20-21页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第21-27页 |
| 3.2.1 实验材料及试剂 | 第21-22页 |
| 3.2.2 主要试剂配制方法 | 第22-23页 |
| 3.2.3 rADSCs的分离培养及条件培养基制备 | 第23-24页 |
| 3.2.4 rADSCs生长曲线 | 第24页 |
| 3.2.5 rADSCs的冻存和复苏 | 第24-25页 |
| 3.2.6 rADSCs表面分化簇抗原表达的流式细胞仪检测 | 第25页 |
| 3.2.7 鉴定rADSCs三向分化潜能 | 第25-27页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第27-33页 |
| 3.3.1 rADSCs的形态及增殖情况 | 第27-28页 |
| 3.3.2 rADSCs的生长曲线 | 第28-30页 |
| 3.3.3 rADSCs表面分化簇抗原表达 | 第30页 |
| 3.3.4 分化潜能 | 第30-33页 |
| 3.4 本章小结 | 第33-39页 |
| 3.4.1 ADSCs用于干细胞治疗具有诸多优势 | 第33-35页 |
| 3.4.2 本实验可以成功分离、培养出符合标准的ADSCs | 第35-37页 |
| 3.4.3 结论 | 第37-39页 |
| 第四章 瘢痕内注射脂肪干细胞对兔耳增生性瘢痕的抑制作用 | 第39-54页 |
| 4.1 引言 | 第39页 |
| 4.2 材料与方法 | 第39-45页 |
| 4.2.1 实验材料及试剂 | 第39-40页 |
| 4.2.2 实验分组及瘢痕内注射 | 第40页 |
| 4.2.3 瘢痕大体检测 | 第40页 |
| 4.2.4 HE及Masson检测 | 第40-42页 |
| 4.2.5 存活ADSCs荧光染色示踪 | 第42页 |
| 4.2.6 RNA抽提及实时荧光定量PCR | 第42-45页 |
| 4.2.7 统计分析 | 第45页 |
| 4.3 实验结果与分析 | 第45-52页 |
| 4.3.1 ADSCs及ADSCs-CM注射均可抑制瘢痕增生 | 第45-49页 |
| 4.3.2 ADSCs及ADSCs-CM抑制基因表达 | 第49-50页 |
| 4.3.3 DMEM注射对瘢痕增生无明显影响 | 第50页 |
| 4.3.4 ADSCs对瘢痕抑制作用较ADSCs-CM显著 | 第50-51页 |
| 4.3.5 ADSCs注射组可见大量存活ADSCs | 第51-52页 |
| 4.4 本章小结 | 第52-54页 |
| 第五章 全文小结及展望 | 第54-59页 |
| 主要参考文献 | 第59-64页 |
| 中英文对照表 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 学术论文和科研成果 | 第66页 |
