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秀丽隐杆线虫prg-1基因对转录组表达影响的研究

摘要第6-8页
Abstract第8-9页
第1章 文献综述第14-28页
    1.1 PRG-1 蛋白是一种AGO类蛋白第14-17页
    1.2 piRNA与PIWI蛋白第17-20页
        1.2.1 piRNA的发现历程第17-19页
        1.2.2 piRNA第19页
        1.2.3 线虫piRNA第19-20页
    1.3 Piwi-piRNA复合物的功能第20-25页
        1.3.1 沉默转座子与Ping-Pong模型第20-22页
        1.3.2 线虫PRG-1 与piRNA的功能第22-25页
    1.4 研究的目的、意义与技术路线第25-28页
第2章 相关实验操作技术第28-40页
    2.1 线虫培养第28-33页
        2.1.1 线虫的常规培养方法第28-30页
        2.1.2 线虫同步化培养第30-33页
    2.2 线虫total RNA提取第33-37页
        2.2.1 RNA提取过程第33-34页
        2.2.2 RNA浓度检测第34页
        2.2.3 RNA电泳检测RNA第34-36页
        2.2.4 RNA电泳质量检测与测序第36-37页
    2.3 prg-1 基因的扩增第37-40页
        2.3.1 DNA提取方法第37-38页
        2.3.2 prg-1 基因结构与突变位置第38-39页
        2.3.3 引物设计和反应条件第39-40页
第3章 秀丽隐杆线虫中新piRNA分析第40-50页
    3.1 分析过程与方法第40-42页
        3.1.1 piRNA寻找思路第40-41页
        3.1.2 线虫培养与小RNA提取测序第41页
        3.1.3 新piRNA预测流程第41-42页
    3.2 结果与分析第42-47页
        3.2.1 线虫N2L4时期内含有大量未知小RNA第42-44页
        3.2.2 新piRNA的表达依赖PRG-1第44-45页
        3.2.3 新piRNA具有piRNA的结构特征第45-47页
        3.2.4 新piRNA与PRG-1 蛋白存在相互作用第47页
    3.3 结论第47-48页
    3.4 讨论第48-50页
        3.4.1 增大测序通量有助于发现低表达的小RNA第48页
        3.4.2 新piRNA可能具有招募 22G RNA合成的功能第48页
        3.4.3 piRNA前体有多种加工产物第48-50页
第4章 prg-1 基因对小RNA表达的影响第50-58页
    4.1 实验材料和方法第50-51页
        4.1.1 线虫培养与小RNA提取测序第50页
        4.1.2 数据分析流程第50-51页
    4.2 结果与分析第51-56页
        4.2.1 测序量统计第51-52页
        4.2.2 prg-1 影响多种小RNA的表达第52-54页
        4.2.3 ncRNA-like型小RNA来自miRNA或piRNA的前体第54-56页
    4.3 结论第56-57页
    4.4 讨论第57-58页
第5章 PRG-1 对基因表达的影响第58-82页
    5.1 mRNA实验与数据分析流程第58-60页
        5.1.1 线虫培养与mRNA提前操作流程第58-59页
        5.1.2 数据分析流程第59-60页
    5.2 测序评估第60-65页
        5.2.1 测序质量评估第60-61页
        5.2.2 数据比对统计第61-63页
        5.2.3 测序饱和度与覆盖度分析分析第63-65页
        5.2.4 测序随机性分析第65页
    5.3 表达差异与功能分析第65-78页
        5.3.1 基因表达量第65-67页
        5.3.2 基因表达差异分析第67-69页
        5.3.3 Gene Ontology功能显著性富集分析与功能分类第69-73页
        5.3.4 KEGG Pathway显著性富集分析第73-78页
    5.4 结论第78-80页
        5.4.1 数据质量可信第79页
        5.4.2 prg-1 基因突变影响着大量基因的表达第79页
        5.4.3 差异表达基因涉及多个基因表达层面第79-80页
    5.5 讨论第80-82页
第6章 prg-1 基因对m RNA降解的影响第82-109页
    6.1 降解组测序原理与数据分析原理第82-84页
        6.1.1 测序原理第82-84页
        6.1.2 数据分析原理第84页
    6.2 降解组数据分析结果第84-87页
        6.2.1 数据分析流程第84-85页
        6.2.2 转录组数据质量可行第85-86页
        6.2.3 降解组数据匹配分析第86-87页
    6.3 靶基因预测与降解组序列第87-96页
        6.3.1 miRNA靶基因与降解组序列第87-90页
        6.3.2 piRNA靶基因与降解组序列第90-95页
        6.3.3 小结第95-96页
    6.4 其它sRNA与降解片段第96-106页
        6.4.1 降解片段附近存在互补sRNA的富集现象第96-97页
        6.4.2 mRNA的降解受到未知小RNA的影响第97-99页
        6.4.3 降解片段基因与生殖基因相关类基因第99-106页
        6.4.4 10nt sRNA序列特点第106页
    6.5 结论第106-107页
    6.6 讨论第107-109页
第7章 结论第109-111页
参考文献第111-116页
附录第116-125页
    附1 新piRNA序列第116-117页
    附2 miRNA-like序列第117-118页
    附3 piRNA-like序列第118-119页
    附4 受prg-1 影响最大的基因第119-122页
    附5 同时富集 10nt和 20nt小RNA的基因第122-123页
    附6 文中使用到的一些单词缩略语的全称第123-125页
致谢第125-127页
攻读学位期间发表的论文第127页

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