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基于Cre/loxp重组系统的人胰岛素原基因植物表达载体的构建及其对烟草和玉米的遗传转化

摘要第7-9页
Abstract第9-10页
第一章 前言第12-27页
    1.1 引言第12页
    1.2 植物反应器的概述第12-16页
        1.2.1 植物生物反应器的发展过程第12-13页
        1.2.2 植物反应器的一般流程第13页
        1.2.3 植物反应器的优缺点第13-14页
        1.2.4 利用植物反应器生产疫苗抗原第14-15页
        1.2.5 利用植物反应器生产抗体第15-16页
    1.3 常用的植物转化策略第16-18页
        1.3.1 稳定的细胞核转化第16页
        1.3.2 稳定的质体转化第16-17页
        1.3.3 植物细胞悬浮培养系统第17页
        1.3.4 瞬时表达系统第17-18页
    1.4 生物反应器低产量的问题和优化方法第18-22页
        1.4.1 宿主植物的选择第18-20页
        1.4.2 启动子的选择第20页
        1.4.3 转录表达的优化第20-22页
    1.5 下游加工的费用的优化第22-23页
        1.5.1 油体蛋白表达系统第22-23页
        1.5.2 口服疫苗第23页
        1.5.3 水培系统和亲和标记物第23页
    1.6 生物安全性问题和解决办法第23-24页
    1.7 胰岛素生产概述第24-27页
        1.7.1 糖尿病及相关治疗药物第24页
        1.7.2 胰岛素的体内合成第24-25页
        1.7.3 胰岛素研究进展第25页
        1.7.4 常用的重组人胰岛素类似物第25页
        1.7.5 人胰岛素的表达系统第25-27页
第二章 实验材料与方法第27-42页
    2.1 实验材料第27-34页
        2.1.1 植物材料第27页
        2.1.2 菌株和质粒第27页
        2.1.3 分子试验试剂和仪器第27-29页
        2.1.4 主要溶液及培养基第29-33页
        2.1.5 引物和胰岛素原基因的改造第33-34页
    2.2 实验方法第34-42页
        2.2.1 基本的分子生物学实验第34-38页
        2.2.2 农杆菌和基因枪法介导的植株转化第38-41页
        2.2.3 转基因植株的PCR检测第41页
        2.2.4 GUS染色验证第41-42页
第三章 实验结果与分析第42-54页
    3.1 植物表达载体的构建第42-46页
        3.1.1 胰岛素原目的基因的获取第42页
        3.1.2 pCAMBIA3301植物表达载体的构建第42-44页
        3.1.3. pCAMBIA2301表达载体构建第44-46页
    3.2 烟草和玉米的遗传转化第46-48页
        3.2.1 农杆菌介导的烟草的遗传转化第46页
        3.2.2 pCAMBIA3301-proinsulin转基因烟草筛选纯合体第46-47页
        3.2.3 农杆菌介导的玉米的遗传转化第47-48页
        3.2.4 基因枪介导的玉米转化流程第48页
    3.3 转基因烟草和玉米的检测第48-52页
        3.3.1 pCAMBIA3301-proinsulin植物表达载体转基因烟草检测第48-50页
        3.3.2 Cre/Loxp系统双表达载体阳性烟草获取和检测第50-52页
    3.4 pCAMBIA3301-proinsulin植物表达载体转基因玉米检测第52-54页
        3.4.1 pCAMBIA3301-proinsulin植物表达载体转基因玉米的RNA的提取第52-53页
        3.4.2 pCAMBIA3301-proinsulin植物表达载体转基因玉米的RT-PCR检测结果第53-54页
第四章 讨论与总结第54-57页
    4.1 胰岛素原表达情况的讨论第54页
    4.2 基因枪法和农杆菌介导法转化玉米方法的比较和影响因素分析第54-55页
    4.3 Cre/IoxP位点特异性重组酶系统删除方法的比较第55-57页
参考文献第57-64页
致谢第64-65页
附件第65页

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