| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 英文缩写词 | 第6-10页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-25页 |
| 1.1 川西獐牙菜和椭圆叶花锚研究概况 | 第12-13页 |
| 1.2 川西獐牙菜化学成分及药理作用的研究 | 第13-17页 |
| 1.2.1 化学成分 | 第13-14页 |
| 1.2.2 药理作用 | 第14-17页 |
| 1.3 椭圆叶花锚化学成分及药理作用的研究 | 第17-19页 |
| 1.3.1 化学成分 | 第17页 |
| 1.3.2 药理作用 | 第17-19页 |
| 1.4 脂质代谢影响因素 | 第19-21页 |
| 1.5 脂代谢关键酶作用机制 | 第21-22页 |
| 1.6 脂质代谢引起相关疾病对机体的影响 | 第22-23页 |
| 1.7 脂肪细胞和3T3-L1小鼠前脂肪细胞 | 第23页 |
| 1.7.1 脂肪细胞 | 第23页 |
| 1.7.2 3T3-L1小鼠前脂肪细胞 | 第23页 |
| 1.8 脂代谢的基因表达 | 第23-24页 |
| 1.9 论文研究的目的、意义及主要内容 | 第24-25页 |
| 第二章 川西獐牙菜和椭圆叶花锚化学成分的分离 | 第25-32页 |
| 2.1 材料与方法 | 第25页 |
| 2.1.1 材料 | 第25页 |
| 2.1.2 实验设备与试剂 | 第25页 |
| 2.2 方法 | 第25-27页 |
| 2.2.1 成分分离纯化 | 第25-27页 |
| 2.3 实验结果与小结 | 第27-31页 |
| 2.3.1 化合物的鉴定 | 第27-29页 |
| 2.3.2 确定化合物 | 第29-31页 |
| 2.3.3 实验小结 | 第31页 |
| 2.4 化合物光谱图 | 第31-32页 |
| 第三章 3T3-L1小鼠前脂肪细胞的培养及药理作用 | 第32-46页 |
| 3.1 材料与方法 | 第32-33页 |
| 3.1.1 材料 | 第32-33页 |
| 3.1.2 主要试剂的配制方法 | 第33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-36页 |
| 3.2.1 3T3-L1小鼠前脂肪细胞的培养 | 第33-34页 |
| 3.2.2 细胞计数 | 第34-35页 |
| 3.2.3 3T3-L1小鼠前脂肪细胞的生长状态 | 第35页 |
| 3.2.4 3T3-L1小鼠成熟脂肪细胞的培养 | 第35页 |
| 3.2.5 油红O染色 | 第35-36页 |
| 3.2.6 化合物培养基的配制 | 第36页 |
| 3.2.7 脂肪细胞存活率实验 | 第36页 |
| 3.3 实验结果与小结 | 第36-46页 |
| 3.3.1 3T3-L1小鼠前脂肪细胞的形态观察 | 第36-37页 |
| 3.3.2 3T3-L1小鼠前脂肪细胞的生长状态 | 第37-38页 |
| 3.3.3 3T3-L1小鼠前脂肪细胞在分化为成熟脂肪细胞的过程 | 第38-40页 |
| 3.3.4 化合物培养基的确定 | 第40-41页 |
| 3.3.5 化合物对脂肪细胞生长抑制效果 | 第41-45页 |
| 3.3.6 实验小结 | 第45-46页 |
| 第四章 脂肪细胞中脂代谢基因的表达作用 | 第46-63页 |
| 4.1 材料与方法 | 第46-47页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第46页 |
| 4.1.2 实验设备与试剂 | 第46页 |
| 4.1.3 主要试剂的配制方法 | 第46-47页 |
| 4.2 实验方法 | 第47-51页 |
| 4.2.1 提取脂肪细胞中的RNA | 第47页 |
| 4.2.2 RNA中去除DNA | 第47-48页 |
| 4.2.3 RNA纯度及浓度的检测 | 第48页 |
| 4.2.4 PCR引物设计 | 第48-49页 |
| 4.2.5 实时荧光定量PCR（RT-PCR） | 第49-51页 |
| 4.3 结果 | 第51-61页 |
| 4.3.1 脂肪细胞提取RNA | 第51页 |
| 4.3.2 RNA纯度及浓度 | 第51-52页 |
| 4.3.3 RT-PCR目的基因的特异性 | 第52-54页 |
| 4.3.4 RT-PCR结果 | 第54-61页 |
| 4.4 实验小结 | 第61-63页 |
| 第五章 实验总结 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-72页 |
| 附录 | 第72-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 个人简历 | 第81页 |