首页--农业科学论文--农作物论文--薯类作物论文--马铃薯(土豆)论文

马铃薯转亚精胺合成酶基因(SPDS)植株低温抗性的初步研究

摘要第4-5页
Abstract第5页
第一章 前言第9-17页
    1 我国马铃薯育种概况第9-10页
    2 逆境胁迫对植物的影响第10-12页
        2.1 低温对植物的影响第10-11页
        2.2 盐渍对植物的影响第11页
        2.3 干旱对植物的影响第11-12页
    3 基因工程在马铃薯分子育种方面的应用第12-14页
        3.1 基因工程在提高马铃薯抗寒性方面的应用第12页
        3.2 基因工程在提高马铃薯耐盐性方面的应用第12-13页
        3.3 基因工程在提高马铃薯耐旱性方面的应用第13页
        3.4 基因工程在提高马铃薯抗病性方面的应用第13-14页
    4 植物多胺概述及其生物合成酶基因在作物抗性育种上的应用第14-16页
        4.1 植物多胺概述第14-15页
        4.2 多胺生物合成酶基因在作物抗性育种上的应用第15-16页
    5 本研究的目的及意义第16-17页
第二章 马铃薯转亚精胺合成酶基因(SPDS)植株导入基因的表达情况第17-29页
    1 实验材料第17-19页
        1.1 植物材料第17-19页
        1.2 主要试剂第19页
        1.3 主要仪器第19页
    2 实验方法第19-23页
        2.1 转SPDS马铃薯植株导入基因表达情况检测第19-20页
            2.1.1 CTAB法提取DNA第19-20页
            2.1.2 PCR检测第20页
        2.2 RT-PCR检测第20-22页
        2.3 多胺高效液相色谱(HPLC)定量分析第22-23页
    3 结果与分析第23-28页
        3.1 PCR检测第23-24页
        3.2 RT-PCR检测第24-26页
        3.3 转SPDS马铃薯植株多胺含量检测第26-28页
    4 讨论第28-29页
第三章 转SPDS马铃薯植株叶片低温抗性的初步评价第29-36页
    1 实验材料第29-30页
        1.1 植物材料第29页
        1.2 主要试剂与仪器第29-30页
    2 实验方法第30-31页
        2.1 转SPDS马铃薯植株低温胁迫处理第30页
        2.2 转SPDS马铃薯植株冷冻抗寒性评价第30-31页
    3 结果与分析第31-34页
        3.1 转SPDS马铃薯植株低温胁迫期间的逆境应答响应和回复常温生育状况的初步观察第31-32页
        3.2 转SPDS马铃薯植株叶片的冷冻低温抗性评价第32页
        3.3 冷冻逆境胁迫下马铃薯植株叶片相对电导率的变化第32-34页
    4 讨论第34-36页
第四章 低温胁迫期间马铃薯生理生化指标的变化第36-51页
    1 实验材料第36-37页
        1.1 植物材料第36页
        1.2 主要试剂第36页
        1.3 主要仪器第36-37页
        1.4 马铃薯植株低温处理第37页
    2 实验方法第37-41页
        2.1 马铃薯植株多胺含量检测第37页
        2.2 光合参数的测定第37-38页
        2.3 低温胁迫期间马铃薯植株生理生化指标的测定第38-41页
    3 结果与分析第41-49页
        3.1 低温胁迫期间转SPDS马铃薯植株多胺含量变化第41-44页
        3.2 低温胁迫期间光合速率的变化第44页
        3.3 低温胁迫期间气孔导度的变化第44-45页
        3.4 低温胁迫期间胞间CO_2浓度的变化第45-46页
        3.5 低温胁迫期间叶绿素含量变化第46页
        3.6 低温胁迫期间SOD酶活力变化第46-47页
        3.7 低温胁迫期间氧自由基含量变化第47-48页
        3.8 低温胁迫期间CAT酶活力变化第48-49页
    4 讨论第49-51页
        4.1 低温胁迫期间转SPDS马铃薯多胺含量的变化第49页
        4.2 低温胁迫期间转SPDS马铃薯植株光合作用的变化第49-50页
        4.3 低温胁迫期间转SPDS马铃薯植株抗氧化系统的变化第50-51页
第五章 遭遇低温胁迫马铃薯植株数字基因表达谱初步分析第51-59页
    1 实验材料第51页
    2 实验方法第51-53页
        2.1 RNA提取与转录组测序第51-52页
        2.2 实验建库流程第52页
        2.3 Reads质量预处理第52页
        2.4 生物信息分析流程第52-53页
        2.5 表达丰度和差异基因表达分析第53页
    3 结果与分析第53-58页
        3.1 Reads质量预处理第53-54页
        3.2 差异基因表达分析第54页
        3.3 GO富集分析第54-56页
        3.4 低温响应差异基因分析第56-58页
    4 讨论第58-59页
第六章 总结与下一步研究设想第59-60页
    1 总结第59页
    2 下一步研究设想第59-60页
参考文献第60-67页
缩写表第67-69页
致谢第69-70页
作者简介第70页

论文共70页,点击 下载论文
上一篇:水稻基因启动子Ospz4的克隆与分析
下一篇:镉污染土壤应用稻壳炭和腐殖酸对水稻生理生化特性的影响