| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-15页 |
| 1.1 结直肠癌研究现状 | 第11页 |
| 1.2 5-氟尿嘧啶治疗结直肠癌的临床应用分析 | 第11-12页 |
| 1.3 绞股蓝皂苷抗肿瘤研究进展 | 第12-15页 |
| 第2章 论文的立论依据、内容、目的和意义 | 第15-17页 |
| 第3章 绞股蓝皂苷联合5-Fu对SW480、Caco2细胞的增殖抑制作用 | 第17-29页 |
| 3.1 材料与方法 | 第17-20页 |
| 3.1.1 细胞来源与培养 | 第17页 |
| 3.1.2 试剂配制 | 第17-18页 |
| 3.1.3 仪器设备 | 第18页 |
| 3.1.4 实验分组及处理 | 第18-19页 |
| 3.1.5 MTT法检测细胞存活率变化 | 第19页 |
| 3.1.6 绞股蓝皂苷、5-Fu协同杀伤细胞的联合指数分析 | 第19页 |
| 3.1.7 克隆形成实验研究绞股蓝皂苷、5-Fu对细胞的增殖抑制作用 | 第19-20页 |
| 3.1.8 统计学分析 | 第20页 |
| 3.2 实验结果 | 第20-26页 |
| 3.2.1 5-Fu作用于SW-480、Caco2细胞存活率变化分析 | 第20-21页 |
| 3.2.2 绞股蓝皂苷作用于SW-480、Caco2细胞存活率变化分析 | 第21-22页 |
| 3.2.3 绞股蓝皂苷、5-Fu对SW-480、Caco2细胞存活率的协同影响 | 第22-24页 |
| 3.2.4 Compusyn分析绞股蓝皂苷、5-Fu杀伤细胞的联合指数变化 | 第24-25页 |
| 3.2.5 绞股蓝皂苷、5-Fu对细胞的增殖抑制作用 | 第25-26页 |
| 3.3 讨论 | 第26-29页 |
| 第4章 绞股蓝皂苷联合5-Fu诱导SW-480细胞凋亡和周期阻滞研究 | 第29-39页 |
| 4.1 材料与方法 | 第29-33页 |
| 4.1.1 细胞来源及培养 | 第29页 |
| 4.1.2 试剂配制 | 第29-31页 |
| 4.1.3 仪器设备 | 第31页 |
| 4.1.4 实验分组及处理 | 第31页 |
| 4.1.5 Annexin V/7-AAD分析药物诱导SW-480细胞凋亡的协同作用 | 第31-32页 |
| 4.1.6 流式细胞仪检测SW-480细胞周期阻滞 | 第32页 |
| 4.1.7 Hoechst 33342染色观察SW-480细胞核形态学变化 | 第32页 |
| 4.1.8 Western blotting分析细胞凋亡和周期转换相关蛋白表达水平及活性变化 | 第32-33页 |
| 4.1.9 统计学分析 | 第33页 |
| 4.2 实验结果 | 第33-37页 |
| 4.2.1 绞股蓝皂苷联合5-Fu诱导SW-480细胞凋亡 | 第33-35页 |
| 4.2.2 绞股蓝皂苷联合5-Fu阻滞SW-480细胞周期运转 | 第35-37页 |
| 4.3 讨论 | 第37-39页 |
| 第5章 绞股蓝皂苷联合5-Fu杀伤SW-480细胞分子机制 | 第39-51页 |
| 5.1 材料与方法 | 第39-42页 |
| 5.1.1 细胞来源及培养 | 第39页 |
| 5.1.2 试剂配制 | 第39-40页 |
| 5.1.3 仪器设备 | 第40页 |
| 5.1.4 实验分组及处理 | 第40页 |
| 5.1.5 绞股蓝皂苷、5-Fu对SW-480细胞DNA的损伤分析 | 第40-41页 |
| 5.1.6 绞股蓝皂苷、5-Fu对SW-480细胞内活性氧(ROS)水平检测 | 第41页 |
| 5.1.7 活性氧抑制剂(NAC)对绞股蓝皂苷、5-Fu诱导的细胞增殖抑制、DNA损伤、细胞凋亡的逆转作用研究 | 第41-42页 |
| 5.1.8 P53表达及活性变化在细胞增殖抑制中的作用机制分析 | 第42页 |
| 5.1.9 统计学分析 | 第42页 |
| 5.2 实验结果 | 第42-48页 |
| 5.2.1 协同用药引起SW-480细胞DNA损伤 | 第42-44页 |
| 5.2.2 活性氧(ROS)水平变化在绞股蓝皂苷、5-Fu诱导的SW-480增殖抑制、DNA损伤、细胞凋亡中的分子机制分析 | 第44-46页 |
| 5.2.3 绞股蓝皂苷、5-Fu引起SW-480细胞增殖抑制的P53功能研究 | 第46-48页 |
| 5.3 讨论 | 第48-51页 |
| 第6章 绞股蓝皂苷联合5-Fu对CT-26荷瘤小鼠的抗肿瘤作用 | 第51-63页 |
| 6.1 材料与方法 | 第51-55页 |
| 6.1.1 实验动物及细胞培养 | 第51页 |
| 6.1.2 试剂配制 | 第51-52页 |
| 6.1.3 仪器设备 | 第52页 |
| 6.1.4 动物模型的建立 | 第52页 |
| 6.1.5 实验分组及处理 | 第52-53页 |
| 6.1.6 小鼠体重及移植瘤体积的测量 | 第53页 |
| 6.1.7 肿瘤组织形态学观察 | 第53-54页 |
| 6.1.8 免疫组化检测肿瘤组织PCNA表达变化 | 第54页 |
| 6.1.9 血清中AST、ALT、BUN、Cr活性分析 | 第54页 |
| 6.1.10 统计学分析 | 第54-55页 |
| 6.2 实验结果 | 第55-60页 |
| 6.2.1 绞股蓝皂苷、5-Fu小鼠肿瘤体积和瘤重分析 | 第55-57页 |
| 6.2.2 绞股蓝皂苷、5-Fu小鼠肿瘤组织显微结构变化 | 第57-58页 |
| 6.2.3 绞股蓝皂苷联合5-Fu肿瘤组织PCNA表达水平影响 | 第58页 |
| 6.2.4 联合处理小鼠体重及脾脏指数变化 | 第58-59页 |
| 6.2.5 协同用药血清中AST、ALT、BUN、Cr活性分析 | 第59-60页 |
| 6.3 讨论 | 第60-63页 |
| 第7章 结论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第75页 |
