| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 引言 | 第12-13页 |
| 文献综述 | 第13-20页 |
| 1 鹿角菜中岩藻多糖的研究概况 | 第13页 |
| 2 岩藻多糖的提取与分离纯化 | 第13-16页 |
| ·岩藻多糖的提取 | 第13-14页 |
| ·岩藻多糖的分离纯化 | 第14-15页 |
| ·岩藻多糖沉淀方法 | 第14页 |
| ·去除杂质 | 第14-15页 |
| ·透析法除杂质 | 第14页 |
| ·除蛋白 | 第14-15页 |
| ·柱层析法 | 第15页 |
| ·纯度鉴定 | 第15页 |
| ·分子量测定 | 第15-16页 |
| ·波谱分析 | 第16页 |
| 3 岩藻多糖的生物活性 | 第16-18页 |
| ·免疫活性 | 第16页 |
| ·抗病毒活性 | 第16-17页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第17页 |
| ·α-葡萄糖苷酶抑制活性 | 第17-18页 |
| 4 岩藻多糖的结构 | 第18-19页 |
| 5 本文的研究内容及研究意义 | 第19-20页 |
| 第二章 响应面法优化鹿角菜中岩藻多糖的提取工艺 | 第20-32页 |
| 1 材料与方法 | 第20-23页 |
| ·实验材料 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20页 |
| ·主要仪器 | 第20-21页 |
| ·实验方法 | 第21-23页 |
| ·岩藻多糖提取工艺研究 | 第21页 |
| ·岩藻多糖含量的测定 | 第21-22页 |
| ·响应面法试验设计 | 第22-23页 |
| ·数据分析 | 第23页 |
| 2 结果与分析 | 第23-31页 |
| ·标准曲线 | 第23页 |
| ·超声波辅助提取法响应面试验设计与结果 | 第23-26页 |
| ·传统水提法响应面试验设计与结果 | 第26-28页 |
| ·超声辅助提取法响应面三维图分析与模型验证 | 第28-29页 |
| ·传统水浴提取法的响应面三维图分析与模型验证 | 第29-30页 |
| ·超声波辅助提取法与传统水浴法对比 | 第30-31页 |
| 3 讨论 | 第31页 |
| 小结 | 第31-32页 |
| 第三章 鹿角菜中岩藻多糖的分离纯化 | 第32-46页 |
| 1 材料与方法 | 第32-35页 |
| ·实验材料与试剂、仪器 | 第32-33页 |
| ·实验材料 | 第32页 |
| ·主要试剂 | 第32页 |
| ·仪器 | 第32-33页 |
| ·实验方法 | 第33-35页 |
| ·强阴离子交换柱层析 | 第33页 |
| ·凝胶过滤柱层析 | 第33页 |
| ·多糖相对分子质量测定 | 第33-34页 |
| ·硫酸基含量测定 | 第34页 |
| ·除去小分子杂质 | 第34页 |
| ·红外光谱分析 | 第34-35页 |
| 2 结果与分析 | 第35-44页 |
| ·强阴离子交换柱层析分离纯化结果与分析 | 第35页 |
| ·主要组分凝胶过滤柱层析分离纯化和分子量纯度结果与分析 | 第35-41页 |
| ·主要组分凝胶过滤柱层析分离纯化结果与分析 | 第35-38页 |
| ·分子量纯度结果与分析 | 第38-41页 |
| ·硫酸基测定结果 | 第41页 |
| ·红外光谱分析 | 第41-44页 |
| 3 讨论 | 第44-45页 |
| 小结 | 第45-46页 |
| 第四章 鹿角菜中岩藻多糖的免疫活性研究 | 第46-59页 |
| 1 材料与方法 | 第46-48页 |
| ·实验材料与主要试剂、仪器 | 第46-47页 |
| ·实验材料 | 第46页 |
| ·主要试剂 | 第46-47页 |
| ·主要仪器 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-48页 |
| ·细胞培养 | 第47页 |
| ·细胞存活率实验 | 第47-48页 |
| ·LPS诱导的RAW 264.7 细胞NO释放实验 | 第48页 |
| ·RAW 264.7 细胞吞噬活性实验 | 第48页 |
| ·统计方法 | 第48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-57页 |
| ·不同多糖组分对Raw264.7 细胞活力的影响 | 第48-50页 |
| ·不同多糖组分对LPS诱导Raw264.7 细胞释放NO的影响 | 第50-54页 |
| ·不同多糖组分对Raw264.7 细胞吞噬活性的影响 | 第54-57页 |
| 3 讨论 | 第57-58页 |
| 小结 | 第58-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 攻读硕士学位期间科研工作情况 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
