摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-10页 |
目录 | 第10-12页 |
英文縮略词 | 第12-13页 |
第一部分 文献综述 | 第13-25页 |
第一章 组蛋白甲基化 | 第14-19页 |
1 组蛋白甲基化概述 | 第14-15页 |
2 组蛋白甲基化种类 | 第15-19页 |
·H3K4 | 第15-16页 |
·H3K36 | 第16页 |
·H3K27 | 第16-17页 |
·H3K9 | 第17-18页 |
·H3K20 | 第18-19页 |
第二章 SUV39H1基因研究进展 | 第19-25页 |
1 研究历史 | 第19-20页 |
2 SUV39H1基因的结构与分布 | 第20页 |
3 SUV39H1基因的功能及其作用机制 | 第20-25页 |
·SUV39H1基因与异染色质的形成 | 第21-22页 |
·SUV39H1与基因的转录表达 | 第22页 |
·SUV39H1和DNA甲基化的关系 | 第22-23页 |
·SUV39H1与组蛋白乙酰化 | 第23-25页 |
第二部分 试验研究 | 第25-73页 |
第三章 SUV39H1表达载体构建及其shRNA片段的筛选 | 第26-60页 |
第一节 水牛SUV39H1基因克隆及其融合表达载体构建 | 第26-46页 |
摘要 | 第26页 |
1 材料与方法 | 第26-37页 |
·材料 | 第26-28页 |
·方法 | 第28-37页 |
2 结果 | 第37-45页 |
·水牛SUV39H1基因ORF克隆与序列分析 | 第37-41页 |
·水牛SUV39H1基因3'UTR序列克隆及分析 | 第41-43页 |
·pEGFP-N1-SUV39H1重组质粒酶切鉴定 | 第43-44页 |
·pEGFP-N1-SUV39H1重组质粒表达检测 | 第44-45页 |
3 分析与讨论 | 第45-46页 |
4 结论 | 第46页 |
第二节 SUV39H1基因在水牛卵泡发育过程中的表达规律 | 第46-51页 |
摘要 | 第46页 |
1 材料与方法 | 第46-49页 |
·材料 | 第46-48页 |
·方法 | 第48-49页 |
2 结果 | 第49-50页 |
3 分析与讨论 | 第50页 |
4 结论 | 第50-51页 |
第三节 水牛SUV39H1基因shRNA表达载体构建及筛选 | 第51-60页 |
摘要 | 第51页 |
1 材料与方法 | 第51-55页 |
·材料 | 第51-53页 |
·方法 | 第53-55页 |
2 结果 | 第55-58页 |
·水牛SUV39H1基因shRNA片段在目的基因靶位点的分析 | 第55页 |
·SUV39H1基因shRNA重组质粒的酶切验证 | 第55-56页 |
·SUV39H1基因shRNA抑制效率检测 | 第56-58页 |
·荧光观察检测 | 第56-57页 |
·qRT-PCR检测分析 | 第57-58页 |
·Western-blot分析 | 第58页 |
3 分析与讨论 | 第58-59页 |
4 结论 | 第59-60页 |
第四章 SUV39H1基因shRNA对转IFNα-2b基因细胞相关基因表达的影响 | 第60-73页 |
摘要 | 第60页 |
1 材料与方法 | 第60-64页 |
·材料 | 第60-61页 |
·方法 | 第61-64页 |
2 结果 | 第64-70页 |
·SUV39H1基因shRNA慢病毒包装及滴度分析 | 第64-66页 |
·SUV39H1基因shRNA病毒感染稳定表达IFNα-2b基因Bcap-37细胞系 | 第66-70页 |
·定量PCR检测 | 第66-69页 |
·IFNα-2b蛋白的Western-blot分析 | 第69-70页 |
3. 分析与讨论 | 第70-72页 |
4 结论 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-78页 |
致谢 | 第78-79页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第79页 |