| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 缩略词(Abbreviation) | 第14-15页 |
| 文献综述 | 第15-67页 |
| 第一章 NO/cGMP信号通路及其调控 | 第15-37页 |
| 1 NOS基因、蛋白结构、催化机理与功能 | 第15-20页 |
| ·NOS的基因结构 | 第15页 |
| ·NOS的蛋白结构 | 第15-18页 |
| ·NOS的催化机理 | 第18-19页 |
| ·NOS的抑制剂 | 第19-20页 |
| 2 NO结构 | 第20页 |
| 3 鸟苷酸环化酶(GC)蛋白的类型、结构 | 第20-21页 |
| 4 环鸟苷酸(cyclic Guanosine Monophosphate,cGMP) | 第21页 |
| 5 cGMP相关磷酸二酯酶(phosphodiesterases,PDE)结构与抑制剂 | 第21-25页 |
| ·cGMP相关磷酸二酯酶结构 | 第21-24页 |
| ·cGMP相关PDE的抑制剂 | 第24-25页 |
| 6 NO/cGMP信号转导通路 | 第25-26页 |
| 7 卵巢中NO的生成及NOS的表达 | 第26-28页 |
| 参考文献 | 第28-37页 |
| 第二章 新生雌性大鼠卵泡形成与发育特点及其调控机制 | 第37-53页 |
| 1 新生雌性大鼠卵泡的结构与发育过程 | 第37-39页 |
| ·卵泡的结构 | 第37-38页 |
| ·新生雌性大鼠卵泡的发育 | 第38-39页 |
| 2 哺乳动物原始卵泡的形成、激活与调控 | 第39-41页 |
| ·哺乳动物原始卵泡的形成 | 第39页 |
| ·原始卵泡的激活 | 第39页 |
| ·原始卵泡激活的调控复杂性 | 第39-41页 |
| 3 PI3K信号通路 | 第41-44页 |
| 4 NO/cGMP信号通路 | 第44-45页 |
| 5 NO/cGMP信号通路与PI3K信号通路的可能关系 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 第三章 细胞自噬与凋亡在新生大鼠卵泡形成和发育中的作用 | 第53-67页 |
| 1 细胞凋亡与细胞自噬 | 第53-58页 |
| ·细胞凋亡 | 第53-55页 |
| ·细胞自噬 | 第55-57页 |
| ·自噬与凋亡之间的相互关系 | 第57-58页 |
| 2 细胞自噬与凋亡在新生大鼠卵泡发育的中的作用 | 第58-60页 |
| 3 NO/cGMP信号通路对细胞凋亡和自噬的影响 | 第60-61页 |
| 4 本研究的目的与意义 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 试验研究 | 第67-131页 |
| 第一章 细胞特异性表达NOS同工酶以及NO/cGMP信号通路在新生雌性大鼠卵巢中的定位与变化 | 第67-85页 |
| 摘要 | 第67页 |
| Abstract | 第67-68页 |
| 1 材料与方法 | 第68-73页 |
| ·试验材料 | 第68-69页 |
| ·仪器 | 第69页 |
| ·方法 | 第69-73页 |
| ·数据统计与分析 | 第73页 |
| 2 结果 | 第73-80页 |
| ·新生大鼠卵巢发育组织学观察 | 第73-74页 |
| ·NOS和sGC蛋白的免疫组化分析 | 第74-76页 |
| ·NOS活性检测 | 第76-77页 |
| ·卵巢中NO含量的检测 | 第77-79页 |
| ·cGMP含量与cGMP相关PDE活性 | 第79-80页 |
| 3 讨论 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-85页 |
| 第二章 cGMP相关磷酸二酯酶(PDE)在新生雌性大鼠卵巢中的表达及其变化 | 第85-95页 |
| 摘要 | 第85页 |
| Abstract | 第85-86页 |
| 1 材料与方法 | 第86-89页 |
| ·材料 | 第86页 |
| ·试剂 | 第86页 |
| ·仪器 | 第86页 |
| ·RT-PCR检测cGMP相关PDEs在新生雌性大鼠卵巢中的表达 | 第86-89页 |
| 2 结果 | 第89-91页 |
| ·总RNA的提取 | 第89-90页 |
| ·RT-PCR结果及半定量分析 | 第90-91页 |
| 3 讨论 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-95页 |
| 第三章 体内研究NOS对新生大鼠卵泡发育的影响 | 第95-107页 |
| 摘要 | 第95页 |
| Abstract | 第95-96页 |
| 1 材料和方法 | 第96-97页 |
| ·动物 | 第96页 |
| ·体内的一氧化氮合成酶抑制和激活模型的建立 | 第96-97页 |
| ·组织蛋白的提取和蛋白浓度检测 | 第97页 |
| ·体内的一氧化氮合成酶抑制和激活模型评价 | 第97页 |
| ·组织学和形态学评价 | 第97页 |
| ·数据统计与分析 | 第97页 |
| 2 结果 | 第97-103页 |
| ·组织学与形态学观察 | 第97-98页 |
| ·新生雌性大鼠体内抑制或激活NOS及其同工酶模型中NOS活性、NO含量检测 | 第98-101页 |
| ·不同处理组卵泡发育的动力学变化 | 第101-103页 |
| 3 讨论 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-107页 |
| 第四章 NOS参与PI3K/AKT/Foxo3a信号通路调节新生大鼠卵泡发育 | 第107-119页 |
| 摘要 | 第107页 |
| Abstract | 第107-108页 |
| 1 材料与方法 | 第108-110页 |
| ·试剂与仪器 | 第108-109页 |
| ·体内的一氧化氮合成酶抑制和激活模型 | 第109页 |
| ·组织蛋白的提取和蛋白浓度检测 | 第109页 |
| ·免疫组化 | 第109页 |
| ·免疫印迹(Western blot)分析 | 第109-110页 |
| ·数据统计析 | 第110页 |
| 2 结果 | 第110-114页 |
| ·PI3K/PETN/AKT/FoxO3a信号通路蛋白在新生大鼠卵巢中的定位 | 第110-111页 |
| ·免疫印迹(Western blot)分析 | 第111-114页 |
| 3 讨论 | 第114-116页 |
| 参考文献 | 第116-119页 |
| 第五章 NOS通过细胞自噬和凋亡参与新生雌性大鼠卵泡发育 | 第119-131页 |
| 摘要 | 第119页 |
| Abstract | 第119-121页 |
| 1 材料与方法 | 第121-122页 |
| ·试剂与仪器 | 第121页 |
| ·体内的一氧化氮合成酶抑制和激活模型 | 第121页 |
| ·组织蛋白的提取和蛋白浓度检测 | 第121页 |
| ·免疫组化 | 第121页 |
| ·免疫印迹(Western blot)分析 | 第121-122页 |
| ·数据统计与分析 | 第122页 |
| 2 结果 | 第122-126页 |
| ·Caspase-3、LC3B蛋白在新生大鼠卵巢中的定位 | 第122-123页 |
| ·免疫印迹(Western blot)分析 | 第123-126页 |
| 3 讨论 | 第126-128页 |
| 参考文献 | 第128-131页 |
| 附录 | 第131-135页 |
| 攻读博士期间发表的论文 | 第135-137页 |
| 致谢 | 第137页 |
